Центры вращающиеся грибковые: Центры вращающиеся грибковые

alexxlab | 05.03.1981 | 0 | Разное

Содержание

Центры вращающиеся грибковые

Центры вращающиеся грибковые Гост 8742-75

Наименование	Цена (с НДС)
Центр грибковый Б-1-2-Н с насад. 25-60	2650,00
Центр грибковый Б-1-3-Н с насад. 30-70	3490,00
Центр грибковый Б-1-4-Н с насад. 30-70	3270,00
Центр грибковый Б-1-4-У с насад. 30-70	3300,00
Центр грибковый Б-1-4-У с насад. 40-90	3780,00
Центр грибковый Б-1-5-Н с насад. 32-80	3900,00
Центр грибковый Б-1-5-У с насад. 40-90	4150,00
Центр грибковый Б-1-5-У с насад. 90-130	6100.00
Центр грибковый Б-1-5-У с насад. 130-180	7250,00
Центр грибковый Б-1-5-У с насад. 180-240	8980,00
Центр грибковый Б-1-5-У с насад. 240-290	13500,00
Центр грибковый Б-1-5-У с насад. 290-340	16900,00
Центр грибковый Б-1-5-У с насад. 340-390	18300,00
Центр грибковый Б-1-6-У с насад. 40-90	6450,00
Центр грибковый Б-1-6-У с насад. 90-130	9550,00
Центр грибковый Б-1-6-У с насад. 130-180	11500,00
Центр грибковый Б-1-6-У с насад. 180-240	11100,00
Центр грибковый Б-1-6-У с насад. 240-290	17200,00
Центр грибковый Б-1-6-У с насад. 290-340	16950,00
Центр грибковый Б-1-6-У с насад. 340-390	19950,00

ТИП 2480 ЦЕНТРЫ ВРАЩАЮЩИЕСЯ ГРИБКОВЫЕ

Описание

КОНУС МОРЗЕ 2, D1= 17.780 мм

Обозначение	Тип	L, мм	L1, мм	D, мм	d, мм	Угол	Нагрузка, Н	Обороты, об/мин	Точность, мм
DS2x60A(60°)	A	143	75	60	20	60°	3 000	3 000	0,012
DS2x60(60°)	B	132	64	60	20	60°	3 000	3 000	0,012
DS2x70A(60°)	A	143	75	70	30	60°	3 000	3 000	0,012
DS2x70(60°)	B	132	64	70	30	60°	3 000	3 000	0,012
DS2x80A(60°)	A	156	75	80	30	60°	4 000	3 000	0,012
DS2x80(60°)	B	145	64	80	30	60°	4 000	3 000	0,012
DS2x90A(60°)	A	156	75	90	40	60°	4 000	2 500	0,012
DS2x90(60°)	B	145	64	90	40	60°	4 000	2 500	0,012

КОНУС МОРЗЕ 3, D1= 23.825 мм

Обозначение	Тип	L, мм	L1, мм	D, мм	d, мм	Угол	Нагрузка, Н	Обороты, об/мин	Точность, мм
DS3x60A(60°)	A	168	94	60	20	60°	3 000	3 000	0,012
DS3x60 (60°)	B	155	81	60	20	60°	3 000	3 000	0,012
DS3x70(60°)	A	168	94	70	30	60°	3 000	3 000	0,012
DS3x70 (60°)	B	155	81	70	30	60°	3 000	3 000	0,012
DS3x80A(60°)	A	175	94	80	30	60°	4 000	3 000	0,012
DS3x80(60°)	B	162	81	80	30	60°	4 000	3 000	0,012
DS3x90A(60°)	A	175	94	90	40	60°	4 000	3 000	0,012
DS3x90 (60°)	B	162	81	90	40	60°	4 000	3 000	0,012
DS3x100A(60°)	A	183	94	100	40	60°	6 000	2 500	0,015
DS3x100(60°)	B	170	81	100	40	60°	6 000	2 500	0,015
DS3x 110A(60°)	A	183	94	110	40	60°	6 000	2 500	0,015
DS3x110(60°)	B	170	81	110	40	60°	6 000	2 500	0,015
DS3x120A(60°)	A	183	94	120	40	60°	6 000	2 000	0,015
DS3x120(60°)	B	170	81	120	40	60°	6 000	2 000	0,015
DS3x130A(60°)	A	197	94	130	40	60°	6 000	2 000	0,015
DS3x130(60°)	B	184	81	130	40	60°	6 000	2 000	0,015
DS3x140A(60°)	A	202	81	140	40	60°	6 000	2 000	0,015
DS3x140(60°)	B	189	94	140	40	60°	6 000	2 000	0,015

КОНУС МОРЗЕ 4, D1= 31.267 мм

Обозначение	Тип	L, мм	L1, мм	D, мм	d, мм	Угол	Нагрузка, Н	Обороты, об/мин	Точность, мм
DS4x60A(60°)	A	193	117.5	60	20	60°	3 000	3 000	0.012
DS4x60(60°)	B	178	102.5	60	20	60°	3 000	3 000	0.012
DS4x70A(60°)	A	193	117,5	70	30	60°	3 000	3 000	0.012
DS4x70(60°)	B	178	102.5	70	30	60°	3 000	3 000	0.012
DS4x80A(60°)	A	208	117.5	80	30	60°	4 000	3 000	0.012
DS4x80(60°)	B	193	102.5	80	30	60°	4 000	3 000	0.012
DS4x90A(60°)	A	208	117,5	90	40	60°	4 000	3 000	0.012
DS4x90(60°)	B	193	102.5	90	40	60°	4 000	3 000	0.012
DS4x100A(60°)	A	208	117.5	100	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS4x100(60°)	B	193	102.5	100	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS4x110A(60°)	A	208	117,5	110	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS4x110(60°)	B	193	102.5	110	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS4x120A(60°)	A	208	117.5	120	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS4x120(60°)	B	193	102.5	120	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS4x130A(60°)	A	222	117.5	130	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS4x130(60°)	B	207	102.5	130	40	60°	8 000	2 000	0.015
DS4x140A(60°)	A	227	117.5	140	40	60°	8 000	2 000	0.015
DS4x140(60°)	B	212	102.5	140	40	60°	8 000	2 000	0.015
DS4x150A(60°)	A	237	117,5	150	40	60°	10 000	1 600	0.020
DS4x150(60°)	B	222	102.5	150	40	60°	10 000	1 600	0.020
DS4x160A(60°)	A	247	117.5	160	40	60°	10 000	1 600	0.020
DS4x160(60°)	B	232	102.5	160	40	60°	10 000	1 600	0.020
DS4x200A(60°)	A	247	1172,5	200	66	60°	10 000	1 600	0.030
DS4x200(60°)	B	232	102.5	200	66	60°	10 000	1 500	0.030

КОНУС МОРЗЕ 5, D1=44.399 мм

Обозначение	Тип	L, мм	L1, мм	D, мм	d, мм	Угол	Нагрузка, Н	Обороты, об/мин	Точность, мм
DS5x60A(60°)	A	225	149.5	60	20	60°	3 000	3 000	0.012
DS5x60(60°)	B	205	129.5	60	20	60°	3 000	3 000	0.012
DS5x70A(60°)	A	225	149,5	70	30	60°	3 000	3 000	0.012
DS5x70(60°)	B	205	129.5	70	30	60°	3 000	3 000	0.012
DS5x80A(60°)	A	240	149.5	80	30	60°	4 000	3 000	0.012
DS5x80(60°)	B	220	129.5	80	30	60°	4 000	3 000	0.012
DS5x90A(60°)	A	240	149,5	90	40	60°	4 000	3 000	0.012
DS5x90(60°)	B	220	129.5	90	40	60°	4 000	3 000	0.012
DS5X100A(60°)	A	248	149.5	100	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS5x100(60°)	B	228	129.5	100	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS5x110A(60°)	A	248	149.5	110	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS5x110(60°)	B	228	129.5	110	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS5x120A(60°)	A	248	149.5	120	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS5x120(60°)	B	228	129.5	120	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS5x130A(60°)	A	254	149.5	130	40	60°	8 000	2 000	0.015
DS5x130(60°)	B	234	129.5	130	40	60°	8 000	2 000	0.015
DS5x140A(60°)	A	259	149,5	140	40	60°	8 000	2 000	0.015
DS5x140(60°)	B	239	129.5	140	40	60°	8 000	2 000	0.015
DS5x150A(60°)	A	269	149.5	150	40	60°	12 000	1 600	0.020
DS5x150(60°)	B	249	129.5	150	40	60°	12 000	1 600	0.020
DS5x160A(60°)	A	279	149,5	160	40	60°	12 000	1 600	0.020
DS5x160(60°)	B	259	129.5	160	40	60°	12 000	1 600	0.020
DS5x200A(60°)	A	279	149.5	200	85	60°	12 000	1 500	0.030
DS5x200(60°)	B	259	129.5	200	85	60°	12 000	1 500	0.030
DS5x250A(60°)	A	302.5	149,5	250	100	60°	12 000	1 000	0.030
DS5x250B(60°)	B	281	129.5	250	100	60°	12 000	1 000	0.030

КОНУС МОРЗЕ 6, D1=63.348 мм

Обозначение	Тип	L, мм	L1, мм	D, мм	d, мм	Угол	Нагрузка, Н	Обороты, об/мин	Точность, мм
DS6x100A(60°)	A	310	210	100	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS6x100(60°)	B	282	182	100	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS6x110A(60°)	A	310	210	110	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS6x110(60°)	B	282	182	110	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS6x120A(60°)	A	310	210	120	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS 6×120(60°)	B	282	182	120	40	60°	8 000	2 500	0.015
DS6x130А(60°)	A	324	210	130	40	60°	8 000	2 000	0.015
DS6x130(60°)	B	296	182	130	40	60°	8 000	2 000	0.015
DS6x140A(60°)	A	329	210	140	40	60°	8 000	2 000	0.015
DS6x140(60)	В	301	182	140	40	60°	8 000	2 000	0.015
DS6x150A(60°)	A	341	210	150	40	60°	12 000	1 600	0.020
DS6x150(60)	В	313	182	150	40	60°	12 000	1 600	0.020
DS6x160A(60°)	A	351	210	160	40	60°	12 000	1 600	0.020
DS6x160(60)	В	323	182	160	40	60°	12 000	1 600	0.020
DS6x200A(60°)	A	341	210	200	66	60°	12 000	1 500	0.030
DS6x200(60°)	В	313	182	200	66	60°	12 000	1 500	0.030
DS6x250A(60°)	A	364.5	210	250	57	60°	16 000	1 000	0.030
DS6x250(60)	В	335	182	250	57	60°	16 000	1 000	0.030

Центры вращающиеся, центры упорные – Центры вращающиеся грибковые тип 2480

Описание:

Применяются для поддержки деталей с большим проходным отверстием. Могут воспринимать большую осевую нагрузку, при соблюдении высокой точности, просты в обращении, что экономит рабочее время и надежны в работе.

Страна производства: Россия.

Обозначения:

КМ 2, D1 = 17,780 мм

Центр вращающийся DS2x60A(60°) Тип A L = 143 мм L1 = 75 мм D = 60 мм d = 20 мм Угол 60°

Нагрузка 3000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS2x60(60°) Тип B L = 132 мм L1 = 64 мм D = 60 мм d = 20 мм Угол 60°

Нагрузка 3000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS2x70A(60°) Тип A L = 143 мм L1 = 75 мм D = 70 мм d = 20 мм Угол 60°

Нагрузка 3000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS2x70(60°) Тип B L = 132 мм L1 = 64 мм D = 70 мм d = 20 мм Угол 60°

Нагрузка 3000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS2x80A(60°) Тип A L = 156 мм L1 = 75 мм D = 80 мм d = 25 мм Угол 60°

Нагрузка 4000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS2x80(60°) Тип B L = 145 мм L1 = 64 мм D = 80 мм d = 25 мм Угол 60°

Нагрузка 4000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS2x90A(60°) Тип A L = 156 мм L1 = 75 мм D = 90 мм d = 25 мм Угол 60°

Нагрузка 4000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS2x90(60°) Тип B L = 145 мм L1 = 64 мм D = 90 мм d = 25 мм Угол 60°

Нагрузка 4000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,012 мм

КМ 3, D1 = 23,825 мм

Центр вращающийся DS3x60A(60°) Тип A L = 168 мм L1 = 94 мм D = 60 мм d = 20 мм Угол 60°

Нагрузка 3000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS3x60 (60°) Тип B L = 155 мм L1 = 81 мм D = 60 мм d = 20 мм Угол 60°

Нагрузка 3000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS3x70(60°) Тип A L = 168 мм L1 = 94 мм D = 70 мм d = 20 мм Угол 60°

Нагрузка 3000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS3x70 (60°) Тип B L = 155 мм L1 = 81 мм D = 70 мм d = 20 мм Угол 60°

Нагрузка 3000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS3x80A(60°) Тип A L = 175 мм L1 = 94 мм D = 80 мм d = 25 мм Угол 60°

Нагрузка 4000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS3x80(60°) Тип B L = 162 мм L1 = 81 мм D = 80 мм d = 25 мм Угол 60°

Нагрузка 4000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS3x90A(60°) Тип A L = 175 мм L1 = 94 мм D = 90 мм d = 25 мм Угол 60°

Нагрузка 4000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS3x90 (60°) Тип B L = 162 мм L1 = 81 мм D = 90 мм d = 25 мм Угол 60°

Нагрузка 4000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS3x100A(60°) Тип A L = 183 мм L1 = 94 мм D = 100 мм d = 30 мм Угол 60°

Нагрузка 6000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS3x100(60°) Тип B L = 170 мм L1 = 81 мм D = 100 мм d = 30 мм Угол 60°

Нагрузка 6000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS3x 110A(60°)Тип A L = 183 мм L1 = 94 мм D = 110 мм d = 35 мм Угол 60°

Нагрузка 6000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS3x110(60°) Тип B L = 170 мм L1 = 81 мм D = 110 мм d = 35 мм Угол 60°

Нагрузка 6000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS3x120A(60°) Тип A L = 183 мм L1 = 94 мм D = 120 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 6000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS3x120(60°) Тип B L = 170 мм L1 = 81 мм D = 120 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 6000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS3x130A(60°) Тип A L = 197 мм L1 = 94 мм D = 130 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 6000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS3x130(60°) Тип B L = 184 мм L1 = 81 мм D = 130 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 6000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS3x140A(60°) Тип A L = 202 мм L1 = 81 мм D = 140 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 6000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS3x140(60°) Тип B L = 189 мм L1 = 94 мм D = 140 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 6000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

КМ 4, D1 = 31,267 мм

Центр вращающийся DS4x60A(60°) Тип A L = 193 мм L1 = 117,5 мм D = 60 мм d = 20 мм Угол 60°

Нагрузка 3000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS4x60(60°) Тип B L = 178 мм L1 = 102,5 мм D = 60 мм d = 20 мм Угол 60°

Нагрузка 3000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS4x70A(60°) Тип A L = 193 мм L1 = 117,5 мм D = 70 мм d = 20 мм Угол 60°

Нагрузка 3000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS4x70(60°) Тип B L = 178 мм L1 = 102,5 мм D = 70 мм d = 20 мм Угол 60°

Нагрузка 3000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS4x80(60°) Тип B L = 193 мм L1 = 102,5 мм D = 80 мм d = 25 мм Угол 60°

Нагрузка 4000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS4x90A(60°) Тип A L = 208 мм L1 = 117,5 мм D = 90 мм d = 25 мм Угол 60°

Нагрузка 4000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS4x90(60°) Тип B L = 193 мм L1 = 102,5 мм D = 90 мм d = 25 мм Угол 60°

Нагрузка 4000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS4x100A(60°) Тип A L = 208 мм L1 = 117,5 мм D = 100 мм d = 30 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS4x100(60°) Тип B L = 193 мм L1 = 102,5 мм D = 100 мм d = 30 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS4x110A(60°) Тип A L = 208 мм L1 = 117,5 мм D = 110 мм d = 35 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS4x110(60°) Тип B L = 193 мм L1 = 102,5 мм D = 110 мм d = 35 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS4x120A(60°) Тип A L = 208 мм L1 = 117,5 мм D = 120 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS4x120(60°) Тип B L = 193 мм L1 = 102,5 мм D = 120 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS4x130A(60°) Тип A L = 222 мм L1 = 117,5 мм D = 130 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS4x130(60°) Тип B L = 207 мм L1 = 102,5 мм D = 130 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS4x140A(60°) Тип A L = 227 мм L1 = 117,5 мм D = 140 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS4x140(60°) Тип B L = 212 мм L1 = 102,5 мм D = 140 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS4x150A(60°) Тип A L = 237 мм L1 = 117,5 мм D = 150 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 10000 Н
Обороты 1600 об/мин
Точность 0,020 мм

Центр вращающийся DS4x150(60°) Тип B L = 222 мм L1 = 102,5 мм D = 150 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 10000 Н
Обороты 1600 об/мин
Точность 0,020 мм

Центр вращающийся DS4x160A(60°) Тип A L = 247 мм L1 = 117,5 мм D = 160 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 10000 Н
Обороты 1600 об/мин
Точность 0,020 мм

Центр вращающийся DS4x160(60°) Тип B L = 232 мм L1 = 102,5 мм D = 160 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 10000 Н
Обороты 1600 об/мин
Точность 0,020 мм

Центр вращающийся DS4x200A(60°) Тип A L = 247 мм L1 = 1172,5 мм D = 200 мм d = 66 мм Угол 60°

Нагрузка 10000 Н
Обороты 1600 об/мин
Точность 0,030 мм

Центр вращающийся DS4x200(60°) Тип B L = 232 мм L1 = 102,5 мм D = 200 мм d = 66 мм Угол 60°

Нагрузка 10000 Н
Обороты 1500 об/мин
Точность 0,030 мм

КМ 5, D1 = 44, 399 мм

Центр вращающийся DS5x60A(60°) Тип A L = 225 мм L1 = 149,5 мм D = 60 мм d = 20 мм Угол 60°

Нагрузка 3000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS5x60(60°) Тип B L = 205 мм L1 = 129,5 мм D = 60 мм d = 20 мм Угол 60°

Нагрузка 3000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS5x70A(60°) Тип A L = 225 мм L1 = 149,5 мм D = 70 мм d = 20 мм Угол 60°

Нагрузка 3000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS5x70(60°) Тип B L = 205 мм L1 = 129,5 мм D = 70 мм d = 20 мм Угол 60°

Нагрузка 3000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS5x80A(60°) Тип A L = 240 мм L1 = 149,5 мм D = 80 мм d = 25 мм Угол 60°

Нагрузка 4000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS5x80(60°) Тип B L = 220 мм L1 = 129,5 мм D = 80 мм d = 25 мм Угол 60°

Нагрузка 4000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS5x90A(60°) Тип A L = 240 мм L1 = 149,5 мм D = 90 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 4000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS5x90(60°) Тип B L = 220 мм L1 = 129,5 мм D = 90 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 4000 Н
Обороты 3000 об/мин
Точность 0,012 мм

Центр вращающийся DS5X100A(60°) Тип A L = 248 мм L1 = 149,5 мм D = 100 мм d = 30 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS5x100(60°) Тип B L = 228 мм L1 = 129,5 мм D = 100 мм d = 30 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS5x110A(60°) Тип A L = 248 мм L1 = 149,5 мм D = 110 мм d = 35 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS5x110(60°) Тип B L = 228 мм L1 = 129,5 мм D = 110 мм d = 35 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS5x120A(60°) Тип A L = 248 мм L1 = 149,5 мм D = 120 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS5x120(60°) Тип B L = 228 мм L1 = 129,5 мм D = 120 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS5x130A(60°) Тип A L = 254 мм L1 = 149,5 мм D = 130 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS5x130(60°) Тип B L = 234 мм L1 = 129,5 мм D = 130 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS5x140A(60°) Тип A L = 259 мм L1 = 149,5 мм D = 140 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS5x140(60°) Тип B L = 239 мм L1 = 129,5 мм D = 140 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS5x150A(60°) Тип A L = 269 мм L1 = 149,5 мм D = 150 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 12000 Н
Обороты 1600 об/мин
Точность 0,020 мм

Центр вращающийся DS5x150(60°) Тип B L = 249 мм L1 = 129,5 мм D = 150 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 12000 Н
Обороты 1600 об/мин
Точность 0,020 мм

Центр вращающийся DS5x160A(60°) Тип A L = 279 мм L1 = 149,5 мм D = 160 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 12000 Н
Обороты 1600 об/мин
Точность 0,020 мм

Центр вращающийся DS5x160(60°) Тип B L = 259 мм L1 = 129,5 мм D = 160 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 12000 Н
Обороты 1600 об/мин
Точность 0,020 мм

Центр вращающийся DS5x200A(60°) Тип A L = 279 мм L1 = 149,5 мм D = 200 мм d = 66 мм Угол 60°

Нагрузка 12000 Н
Обороты 1500 об/мин
Точность 0,030 мм

Центр вращающийся DS5x200(60°) Тип B L = 259 мм L1 = 129,5 мм D = 200 мм d = 66 мм Угол 60°

Нагрузка 12000 Н
Обороты 1500 об/мин
Точность 0,030 мм

Центр вращающийся DS5x250A(60°) Тип A L = 302,5 мм L1 = 149,5 мм D = 250 мм d = 100 мм Угол 60°

Нагрузка 12000 Н
Обороты 1000 об/мин
Точность 0,030 мм

Центр вращающийся DS5x250B(60°) Тип B L = 281 мм L1 = 129,5 мм D = 250 мм d = 100 мм Угол 60°

Нагрузка 12000 Н
Обороты 1000 об/мин
Точность 0,030 мм

КМ 6, D1 = 63,348 мм

Центр вращающийся DS6x100A(60°) Тип A L = 310 мм L1 = 210 мм D = 100 мм d = 30 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS6x100(60°) Тип B L = 282 мм L1 = 182 мм D = 100 мм d = 30 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS6x110A(60°) Тип A L = 310 мм L1 = 210 мм D = 110 мм d = 35 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS6x110(60°) Тип B L = 282 мм L1 = 182 мм D = 110 мм d = 35 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS6x120A(60°) Тип A L = 310 мм L1 = 210 мм D = 120 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS 6×120(60°) Тип B L = 282 мм L1 = 182 мм D = 120 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2500 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS6x130А(60°) Тип A L = 324 мм L1 = 210 мм D = 130 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS6x130(60°) Тип B L = 296 мм L1 = 182 мм D = 130 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS6x140A(60°) Тип A L = 329 мм L1 = 210 мм D = 140 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS6x140(60) Тип В L = 301 мм L1 = 182 мм D = 140 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 8000 Н
Обороты 2000 об/мин
Точность 0,015 мм

Центр вращающийся DS6x150A(60°) Тип A L = 341 мм L1 = 210 мм D = 150 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 12000 Н
Обороты 1600 об/мин
Точность 0,020 мм

Центр вращающийся DS6x150(60) Тип В L = 313 мм L1 = 182 мм D = 150 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 12000 Н
Обороты 1600 об/мин
Точность 0,020 мм

Центр вращающийся DS6x160A(60°) Тип A L = 351 мм L1 = 210 мм D = 160 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 12000 Н
Обороты 1600 об/мин
Точность 0,020 мм

Центр вращающийся DS6x160(60) Тип В L = 323 мм L1 = 182 мм D = 160 мм d = 40 мм Угол 60°

Нагрузка 12000 Н
Обороты 1600 об/мин
Точность 0,020 мм

Центр вращающийся DS6x200A(60°) Тип A L = 341 мм L1 = 210 мм D = 200 мм d = 66 мм Угол 60°

Нагрузка 12000 Н
Обороты 1500 об/мин
Точность 0,030 мм

Центр вращающийся DS6x200(60°) Тип В L = 313 мм L1 = 182 мм D = 200 мм d = 66 мм Угол 60°

Нагрузка 12000 Н
Обороты 1500 об/мин
Точность 0,030 мм

Центр вращающийся DS6x250A(60°) Тип A L = 364,5 мм L1 = 210 мм D = 250 мм d = 57 мм Угол 60°

Нагрузка 16000 Н
Обороты 1000 об/мин
Точность 0,030 мм

Центр вращающийся DS6x250(60) Тип В L = 335 мм L1 = 182 мм D = 250 мм d = 57 мм Угол 60°

Нагрузка 16000 Н
Обороты 1000 об/мин
Точность 0,030 мм

Центры вращающиеся грибковые для трубтип 8825 « ООО “ОМТС” Запасные части к станкам, оснастка и комплектующие.

**Центры вращающиеся грибковые, для труб**
Название	MK	A	B	C	D	L	Биение	Макс. мин-1	Макс. нагрузка, кг	Масса, кг
8825-1	1	20	39,5	35	50	93	0,008	5000	100	0,35
8825-2	2	30	40.5	35	60	104,5	0,008	5000	180	0,6
8825-2-1	2	30	59	53	80	123	0,008	4500	300	1,25
8825-3	3	30	59	53	80	140	0,008	4500	350	1,35
8825-3-1	3	40	67	61	100	148	0,008	3000	550	2,3
8825-3-2	3	50	76	70	120	157	0,008	3000	600	2,5
8825-4	4	40	68,5	61	100	171	0,008	3000	600	2,55
8825-4-1	4	50	77,5	70	120	180	0,008	3000	700	3,65
8825-4-2	4	70	77,5	70	140	180	0,010	3000	700	5,0
8825-5	5	50	77,5	70	120	207	0,010	3000	750	4,5
8825-5-1	5	100	77,5	70	170	207	0,020	2000	750	8,0
8825-6	6	180	116	107	292	298	0,050	1000	2000	34

Если Вы не нашли интересующую Вас позицию, свяжитесь с нами по телефону

8 (800) 500-27-33, и мы предоставим Вам полную информацию!

Центры грибковые | БелСтанкоТех ООО

Центры вращающиеся 60° грибковые

Тип 8825
Типы хвостовиков

Тип	К Морзе	A	В	С	D	L	Max масса детали, кг	Max скорость, об/мин	Биение , мм	Масса, кг
8825-1	1	20	39,5	35	50	93	100	5000	0,008	0,35
8825-2	2	30	40,5	35	60	104,5	180	5000	0,008	0,6
8825-2-1	2	30	59	53	80	123	300	4500	0,008	1,25
8825-3	3	30	59	53	80	140	350	4500	0,008	1,35
8825-3-1	3	40	67	61	100	148	550	3000	0,008	2,3
8825-3-2	3	50	76	70	120	157	600	3000	0,008	2,5
8825-4	4	40	68,5	61	100	171	600	3000	0,008	2,55
8825-4-1	4	50	77,5	70	120	180	700	3000	0,008	3,65
8825-4-2	4	70	77,5	70	140	180	700	3000	0,01	5
8825-5	5	50	77,5	70	120	207	750	3000	0,01	4,5
8825-5-1	5	100	77,5	70	170	207	750	2000	0,02	8
8825-6	6	180	116	107	292	298	2000	1000	0,05	34

Пример заказа: 8825- 4 — заказан вращающийся грибковый центр с D=100 мм с посадкой на 4-ый конус Морзе

Центра упорные вращающиеся грибковые твердосплавные

Наименование	Наличие на складе	Оптовая цена
Центр Вращающийся КМ-2 удлиненный, вылет 40мм	В наличии	2882,88
Центр Вращающийся КМ-2	В наличии	2143,44
Центр Вращающийся КМ-2 высокоскоростной,с повыш-ой точностью 5000 об/мин,биение 0,005	В наличии	4065,84
Центр Вращающийся КМ-2 твердосплавный	В наличии	2845,44
Центр Вращающийся КМ-2 х D60, 60° грибковый (трубный)	В наличии	2436,48
Центр Вращающийся КМ-3	В наличии	2218,32
Центр Вращающийся КМ-3 (А-1-3-Н)	В наличии	2214,72
Центр Вращающийся КМ-3 (А-1-3-Н) (Саранск)	В наличии	2318,40
Центр Вращающийся КМ-3 высокоскоростной,с повыш-ой точностью 4300 об/мин,биение 0,005	В наличии	4582,80
Центр Вращающийся КМ-3 с обратным (внутренним) конусом 60°	В наличии	2579,76
Центр Вращающийся КМ-3 твердосплавный	В наличии	3607,20
Центр Вращающийся КМ-3 У усиленный	В наличии	10907,28
Центр Вращающийся КМ-3 удлиненный, вылет 45мм	В наличии	2957,76
Центр Вращающийся КМ-3 х D90, 60° грибковый (трубный)	В наличии	3291,84
Центр Вращающийся КМ-4	В наличии	2772,72
Центр Вращающийся КМ-4 (А-1-4-Н) (Саранск)	В наличии	3769,92
Центр Вращающийся КМ-4 высокоскоростной,с повыш-ой точностью 3200 об/мин биение 0,005	В наличии	5063,76
Центр Вращающийся КМ-4 Н (А-1-4-Н) с обратным конусом (Саранск)	В наличии	2736,00
Центр Вращающийся КМ-4 Н (А-2-4-Н) ЧПУ (Саранск)	В наличии	6048,00
Центр Вращающийся КМ-4 с обратным (внутренним) конусом 60°	В наличии	2976,48
Центр Вращающийся КМ-4 твердосплавный	В наличии	3953,52
Центр Вращающийся КМ-4 У (усиленный) (А-1-4-У)	В наличии	2875,68
Центр Вращающийся КМ-4 У усиленный	В наличии	12516,48
Центр Вращающийся КМ-4 У усиленный (Б-1-4-У) грибковый с насад. 40-90 (Саранск)	В наличии	8280,00
Центр Вращающийся КМ-4 удлиненный, вылет 45мм	В наличии	3512,16
Центр Вращающийся КМ-4 х D110, 75° грибковый (трубный)	В наличии	4406,40
Центр Вращающийся КМ-5	В наличии	4434,48
Центр Вращающийся КМ-5 Н (А-1-5-Н) (Саранск)	В наличии	4027,68
Центр Вращающийся КМ-5 Н (А-1-5-Н) с обратным конусом (Саранск)	В наличии	4608,00
Центр Вращающийся КМ-5 Н (Б-1-5-Н) грибковый с насад. 32-80 (Саранск)	В наличии	7272,00
Центр Вращающийся КМ-5 твердосплавный	В наличии	6164,64
Центр Вращающийся КМ-5 У усиленный	В наличии	15006,24
Центр Вращающийся КМ-5 У усиленный (А-1-5-У)(Саранск)	В наличии	6151,68
Центр Вращающийся КМ-5 удлиненный, вылет 65мм	В наличии	3696,48
Центр Вращающийся КМ-5 х D 70, 60° грибковый (трубный) (ВЦГ 5х70(60°) (Саранск)	В наличии	6736,32
Центр Вращающийся КМ-5 х D100, 60° грибковый (трубный) (ВЦГ 5х100(60°) (Саранск)	В наличии	10368,00
Центр Вращающийся КМ-5 х D200, 75° грибковый (трубный)	В наличии	15189,12
Центр Вращающийся КМ-6	В наличии	8457,12
Центр Вращающийся КМ-6 высокоскоростной, с повышенной точностью 2000 об/мин биение 0,01	В наличии	16160,40
Центр Вращающийся КМ-6 твердосплавный	В наличии	14376,96
Центр Вращающийся КМ-6 У усиленный	В наличии	29566,08
Центр Вращающийся КМ-6 У усиленный (Б-1-6-У) грибковый с насад. 40-90 (Саранск)	В наличии	13824,00
Центр Вращающийся КМ-6 удлиненный, вылет 75мм	В наличии	11907,36
Центр Вращающийся КМ-6 х D250, 75° грибковый (трубный)	В наличии	23846,40
Задняя бабка с регулировкой высоты центра 68- 95мм	В наличии	11072,88
Задняя бабка с регулировкой высоты центра 90-110мм	В наличии	15773,76
Задняя бабка с регулировкой высоты центра 100-135мм	В наличии	16647,12
Центр Упорный цилиндрический d 18мм L 90мм М12х1,75 с продольным пазом	В наличии	561,60
Центр Упорный цилиндрический d 19мм c продольным пазом для задней бабки WZ	В наличии	2332,08
Центр Упорный № 1 полуцентр твердосплавный	В наличии	591,84
Центр Упорный № 2 L 85мм	В наличии	561,60
Центр Упорный № 2 (7032-0105) с отжимной гайкой	В наличии	563,76
Центр Упорный № 2 полуцентр твердосплавный	В наличии	776,88
Центр Упорный № 2 твердосплавный	В наличии	589,68
Центр Упорный № 3 (7032-0023) L110мм	В наличии	504,00
Центр Упорный № 3 (7032-0024) твердосплавный ВК8 (Саранск)	В наличии	616,32
Центр Упорный № 3 полуцентр твердосплавный	В наличии	1256,40
Центр Упорный № 3 твердосплавный	В наличии	722,88
Центр Упорный № 4 полуцентр ВК8 (7032-0080) (Саранск)	В наличии	1353,60
Центр Упорный № 4 полуцентр твердосплавный	В наличии	1242,72
Центр Упорный № 4 твердосплавный	В наличии	1113,84
Центр Упорный № 6 (7032-0043) (Саранск)	В наличии	3222,72
Центр Упорный № 6 полуцентр твердосплавный	В наличии	4515,12

Самая грязная часть тела человека

Бактерии — это не всегда плохо, скорее даже наоборот. Микроорганизмы населяют поверхность нашей кожи, еще большее их количество находится внутри организма. Бактерии помогают нормальной работе органов пищеварения, деятельности всех систем организма. Без невидимых глазу, но необыкновенно полезных микро-жителей организм просто погиб бы. Хотя неприметные микробы только по одиночке. Если бактерии разом вывести из организма взрослого человека, общий вес составит более трех килограммов. Многие являются болезнетворными, вызывающими воспаления, раздражения и куда более сильные недуги. В одних частях тела и органах человека бактерий и других загрязнений в разы больше, чем в других, даже при соблюдении гигиены. Удивительно, но самыми грязными местами и органами человека могут оказаться совсем не те, которые могут сразу прийти на ум.

Самые грязные части тела человека

Гигиена — важная часть бытового, социального поведения человека, сообщающая обществу прежде всего об уважении к себе. Соблюдение элементарных правил позволяет избегать заражения болезнями, передающимися, например, через рукопожатия. Своевременная чистка зубов, принятие душа, другие гигиенические процедуры позволяют поддерживать тело и все органы в видимой чистоте. Даже если приложить максимально серьезные усилия, грязь, а точнее все бактерии, смыть не удастся. На теле существует несколько более грязных, по сравнению с другими частями, мест и органов.
В топ-10 самых грязных мест на теле человека входят:

Пупок — труднодоступное место на радость бактериям.
Ротовая полость — миллионы бактерий в одном месте.
Подмышечные впадины — пот, трение, бактерии.
Складки кожи — рай для бактерий.
Паховая область — активное размножение бактерий в тепле.
Анус — главное соблюдать гигиену.
Уши — опасность воспаления.
Кожа под волосами — моем голову чаще.
Носоглотка — идеальная среда для микробов.
Стопы — одна из самых проблемных частей тела.

Пупок — самая грязная часть тела человека

Поразительно, но недавние исследования ученых показали: самым грязным местом на теле человека является пупок. В среднем здесь обитает порядка 70 различных видов бактерий. Конечно, общее число не сравнится, например, с объемом микробов, находящихся во рту. Однако, как показали проверки, именно эту часть тела человек моет с наименьшей тщательностью.

Особенно грязным орган бывает, если имеет углубленную форму. Она становится труднодоступной: во время принятия душа тщательно промыть место не получается. Более того, попавшие в углубление капельки воды остаются там, провоцируя еще большее размножение микроорганизмов. Для них в этом месте создается идеальная среда: тепло, влажно.

Чтобы всегда держать потенциально самое грязное место на теле чистым, стоит его регулярно протирать влажным ватным диском. Раз в неделю потребуется ватная палочка, смоченная в мыльном растворе или настойке с антисептическим средством, например, можно пользоваться ромашкой, фурацилином, перекисью водорода. Орган не связан со слизистыми, воспаления случаются редко, однако такой факт не снимает с него звания самой грязной части тела.

Рот — место с самым грязным органом человека

Ученые выяснили, что при «взрослом» десятисекундном поцелуе при передаче слюны человек обменивается с партнером 80 миллионами бактерий. А теперь представьте, насколько огромное их количество всегда содержится в ротовой полости. Неприятный запах изо рта, если не связан с проблемами с желудком и стоматологией, возникает из-за гниения, разложения частичек пищи, порождающих увеличение числа микроорганизмов.

Чтобы избежать негативных последствий, специалисты рекомендуют чистить зубы 3-4 раза в день и после каждого приема пищи использовать зубную нить, ополаскиватель для рта. Самым грязным органом, расположенным во рту, является язык. Именно на этом органе скапливается больше всего бактерий, часто образующих неприятный налет. Обычно проявление связано с заболеваниями пищеварительной системы, однако оставлять налет без внимания нельзя. Параллельно с устранением причин появления необходимо убирать симптомы: чистить самый грязный орган специальной щеткой для языка.

Подмышки — дезодорант не поможет

Важность устранения неприятного запаха пота знают все: о необходимости гигиены подмышек с экранов телевизора не устают сообщать многочисленные рекламы. Стоит развеять заблуждение: свежий пот не пахнет ничем. Вы можете легко проверить информацию, понюхав пот, выделившийся, например, на предплечье во время спортивной тренировки.

Неприятный запах вызван взаимодействием пота и бактерий. Подмышечные впадины могут похвастаться не меньшим количеством микробов, чем ротовая полость: около 80 миллионов на квадратный сантиметр. В результате начинаются процессы распада, гниения пота, приводящие к неприятному запаху. Использование дезодорантов уменьшает выделение жидкости, однако число подмышечных бактерий не уменьшается при использовании защитных средств.

Складки кожи — есть не только у людей с избыточным весом

В кожных складках часто образуются опрелости, покраснения, высыпания, воспаления. Все провоцирует деятельность микроорганизмов: из-за тепла, выделения пота они начинают активно размножаться, делая это место на теле человека одним из самых грязных.

По большей части, проблема беспокоит полных. Невозможно должным образом протирать все имеющиеся складки, следить за гигиеной, поэтому часто небрежность приводит к образованию неприятного запаха, серьезных кожных заболеваний. Свойственна проблема не только людям с избыточным весом. Часто складка образуется под грудью, вызывая аналогичные проблемы.

Паховая область — место повышенного внимания

Физиология паховой области обеспечивает отличные условия для появления микроорганизмов. Здесь всегда:

тепло;
темно;
выделяются естественные жидкости;
есть складки;
активно выделяется пот.

Усугубляет ситуацию наличие в паховой области волос, дополнительно задерживающих микроскопические частички пыли, грязи, естественных выделений. Дополнительным фактором риска выступают жидкости половых органов и мочевыделительной системы, в течение дня провоцирующие активное размножение бактерий, вызывающих неприятный запах. Чтобы избежать неприятностей, стоит тщательно следить за гигиеной, особенно в жаркую погоду: тщательное мытье снизит потоотделение. Также необходимо дважды в день менять белье, при необходимости, контролировать избыточный рост волос, обращаться за консультацией к врачу-специалисту.

Анус — не самое грязное место, если следить за гигиеной

Анус служит конечным органом в системе выведения ненужных организму продуктов. Неудивительно, что именно эту часть тела принято считать самой грязной. Анус всегда находится под одеждой, имеет складчатую структуру, располагается в темном, теплом, влажном месте. Безусловно, бактерии здесь размножаются быстрее, чем на открытых частях тела, однако при должной гигиене их количество не вызывает неприятных последствий.

Некоторые микроорганизмы, размножающихся именно в таком месте, могут оказывать негативное влияние на пищеварительную систему, вызывать инфекции. Особенно важно проводить водные процедуры после посещения туалета, а затем мыть руки с дезинфицирующими средствами. Орган имеет важнейшее значение для пищеварительной системы, комфортной жизни: следить за чистотой необходимо особенно тщательно.

Уши — важно следить за чистотой

Содержащаяся в ушах сера — это не просто побочный продукт жизнедеятельности. Она защищает барабанную перепонку и внутренние органы уха от повреждений, сильных шумов. Кроме того, хотя мы считаем ее грязью, сера очищает труднодоступные части слуховой системы.

Когда вещества вырабатывается слишком много, или уши должным образом не чистятся, образуются серные пробки. Они не только вызывают у человека дискомфорт, но и способствуют активному размножению бактерий. Рано или поздно процесс не только сделает этот орган самым грязным на теле, но спровоцирует воспаление, способное обернуться серьезными последствиями.

Кожа под волосами — мытье головы не только ради здоровых волос

Участки тела, покрытые растительностью, являются более грязными, чем лишенные ее. Сложнее мужчинам, особенно тем, у кого волосами покрыта значительная поверхность тела: соблюдать гигиену приходится еще более тщательно. В волосах создается более комфортная среда для размножения микроорганизмов, кроме того, в них застревает множество микрочастиц пыли, грязи.

Больше всего волос на голове. Здесь, к радости бактерий, добавляются такие факторы, как активные выделения потовых, сальных желез: настоящий курорт. Именно поэтому стоит забыть про сомнительные советы «отучения» волос от шампуней и мытья головы раз в неделю. За столь длительный период сальные и потовые железы выработают огромное количество веществ. Смешавшись с грязью и пылью, выделения организма могут привести к появлению перхоти, себореи, воспалительных процессов.

Носоглотка — микробов много, но они не опасны

В носоглотке, как и в ротовой полости, создана идеальная среда для размножения бактерий и других микроорганизмов. Внутри органа тепло, сыро, темно. Если понимать под грязью именно бактерии, здесь их не счесть: миллионы, даже миллиарды. Кроме того, к ним добавляются застрявшие на волосках носа частички пыли и грязи.

Небрежность, лень, отсутствие должной гигиены приводят к воспалительным процессам, образованию в благоприятном для микроорганизмов месте обильной слизи, даже корочек на внутренних стенках носа. Чтобы избежать неприятных последствий, орган необходимо регулярно прочищать, при необходимости промывать носоглотку специальными солевыми растворами.

Стопы — держи ноги не только в тепле, но и в чистоте

Наряду с запахом пота, запах ног находится в топе исходящих от человека неприятных ароматов. Как в случае с подмышечными впадинами, пот здесь ни при чем: дело в бактериях. Стопы постоянно соприкасаются с голой поверхностью: полом в квартире, песком, землей, водой, а также с обувью. В первом случае это место не только пачкается видимым загрязнением, но может подцепить самые разные вирусы и грибки. Многие из них никак себя не проявляют, однако могут вызвать стремительный рост микроорганизмов со всеми вытекающими последствиями (в том числе запахом).

Особенно сильно эффект проявляется в холодный период, когда на эту часть тела мы надеваем теплую обувь. Повышенная температура, отделение пота провоцируют рост бактерий. Общее количество микробов за день может достигнуть небывалых размеров, а амбре — невероятных масштабов. Чтобы избежать проявлений грибкового заболевания, после прогулок стоит тщательно мыть часть тела и мазать антибактериальным кремом. Закрытую обувь стоит каждый день протирать изнутри салфетками и не реже раза в месяц менять стельки. Также при возможности в помещении теплую обувь нужно менять на легкую: комфортная тепловая среда позволит не превратить эту часть тела человека в самую грязную.

Видео

Решения и признаки распространенных болезней томатов

Составлено резидентом по садоводству, доктором Энн Хазлериг

Грибок, вызывающий раннюю гниль, перезимовывает на листьях томатов прошлого года. Вращающиеся грядки – самый простой способ предотвратить это грибковое заболевание.

Этим летом в огороде от фермы до стола в King’s Garden будут выращивать брендивин и помидоры Purple Cherokee. Несмотря на то, что это была прохладная весна, и многие овощи в теплый сезон все еще ждут в теплице, давайте рассмотрим некоторые общие проблемы с помидорами, с которыми мы сталкиваемся в Королевском саду.

Септориозная пятнистость (показано здесь) и ранняя гниль первыми поражают нижние листья томатов, так как они находятся ближе к спорам, выходящим из мертвых листьев помидоров на земле.

Помидоры следует высаживать при повышении температуры почвы и исчезновении опасности заморозков. Грибковые пятна на листьях являются основной проблемой для томатов, две из которых наиболее распространены – это фитофтороз и септориоз на листьях. Мы видим это в некоторой степени каждый год, обычно ближе к концу июня, когда дождливые годы приводят к еще большему количеству болезней.Заболевания выглядят немного по-другому (пятна на листьях, вызывающие ожоги, имеют вид «бычий глаз», а пятна септориоза обычно меньше с серыми центрами), но в основном оба действуют одинаково. Зимует гриб на больных листьях томатов, оставленных в саду с прошлого года. Когда становится теплее, споры попадают на нижние листья томата. Листовые пятна развиваются, затем образуются новые споры, которые разносятся ветром, и вода попадает на верхние листья растения. С каждым дождем болезнь распространяется по растению.К счастью, в начале сезона есть несколько простых культурных приемов, которые помогут свести к минимуму ущерб от этих болезней.

Фитофтороз обрушивается ветром и дождем из более теплого климата южнее. Может, но не всегда поражает помидоры в Северной Стране.

Легко начать с ежегодной ротации грядок с помидорами на новые места, чтобы новые растения не попадали на зараженные листья томатов с прошлого года. Использование мульчи вокруг основания растений может помочь предотвратить попадание спор на нижние листья.Избегание полива сверху в саду поможет уменьшить влажность листьев, что уменьшит инфекцию. Ставка помидоров улучшает циркуляцию воздуха и сушку. Поддержание плодородия растений наряду с хорошим регулярным поливом позволяет растению лучше противостоять болезни, как и мы, и есть здоровую пищу и много спать! Сорта могут различаться по своей восприимчивости к этим пятнистым пятнам, и в последние несколько лет были разработаны некоторые сорта, устойчивые к этим заболеваниям пятнистости листьев.В крайнем случае – использование фунгицида. Это создает барьер, препятствующий проникновению спор, но, поскольку помидоры быстро растут, а фунгициды разрушаются на солнце и под дождем, материал необходимо наносить каждые 7-10 дней в зависимости от погоды.

Поскольку фитофтороз возникает из-за спор, переносимых дождем, в первую очередь поражаются верхние листья томатов. Это заболевание может быстро убить растения томатов, и его необходимо лечить фунгицидами.

Третья болезнь томатов, называемая фитофторозом, очень агрессивна и стала причиной большого картофельного голода в Ирландии в 1840-х годах.Этот грибоподобный патоген не зимует в северной части штата Нью-Йорк или Вермонт, а проникает сюда из южных штатов. В зависимости от погодных условий патоген «перепрыгивает» свой путь в Северную страну на фронтах штормов. Если штормы не начнутся с юга во время вегетационного периода, мы можем вообще не увидеть болезнь, как это было в 2018 и 2019 годах. Возбудитель фитофтороза начинается в верхней части растения, так как разносимые ветром споры падают вниз. на верхние листья во время штормов. Патоген вызывает более крупное пятно, пропитанное водой, и может уничтожить посевы примерно за неделю, если погода прохладная и влажная.Единственное средство борьбы с этим заболеванием – фунгициды. Обычно, когда это заболевание находится поблизости, специалисты по расширению посевов предупреждают садоводов и садоводов о том, чтобы они начали защищать свои растения фунгицидами.

Щелкните здесь, чтобы получить дополнительную информацию и фотографии этих болезней томатов.

Болезни фасоли и гороха

Фасоль и южный горох, в том числе вигновый, черноглазый и горох обыкновенный, обычно поражаются многими болезнями в домашнем саду.Многих из этих проблем можно успешно избежать, следуя рекомендованным культурным обычаям.

Сертифицированные семена растений или семена известного высокого качества, обработанные фунгицидом.
Выбрать устойчивые сорта для посадки.
Поверните место посадки фасоли в саду.
Сажайте фасоль в хорошо дренированном месте и избегайте полива сверху.
Удаляйте остатки фасоли с сада после сбора урожая, так как именно здесь некоторые болезнетворные агенты могут пережить зиму.

Дополнительная информация об успешном выращивании фасоли и южного гороха доступна в HGIC 1302, Bush & Pole Type Snap Beans и HGIC 1319, Southern Pea.

Антракноз

Стручки фасоли с черными впалыми поражениями или красновато-коричневыми пятнами, скорее всего, имеют антракноз, грибковое заболевание, вызываемое Colletotrichum lindemuthianum . На стеблях, стручках и листьях проростков (семядоли) появляются черные впалые язвы диаметром около ½ дюйма, но наиболее заметны на стручках.В очагах поражения может образовываться ил лососевого цвета, а жилки на нижней поверхности листьев становятся черными. Симптомы лимской фасоли – появление сажи на листьях и стручках. Антракноз развивается в основном весной и осенью, когда погода прохладная и влажная, а не в жаркое и сухое лето. Бобы Лима особенно восприимчивы.

Профилактика и лечение: Предотвратите это заболевание, используя сертифицированные незараженные семена для посадки и удаления всех растительных остатков после сбора урожая.Антракноз может выживать в почве два года на растительных остатках или попадать в сад на зараженных семенах. Не сажайте семена фасоли на территории, которая болела в течение двух-трех лет. Избегайте полива сверху и избегайте попадания брызг почвы на растения при поливе. Фунгицидные спреи с фиксированной медью – единственное рекомендованное химическое вещество, которое можно использовать на фасоли Лимы для борьбы с антракнозом. Либо фунгициды меди, либо хлороталонил можно использовать для обработки фасоли. Подождите семь дней между опрыскиванием хлорталонилом и сбором урожая и один день между опрыскиванием фунгицидом меди и сбором урожая.Хлороталонил и фунгициды меди дают хороший контроль над антракнозом. Распыляйте хлороталонил с 7-дневными интервалами, а фунгициды меди с 10-дневными интервалами. Нанесите в соответствии с указаниями на этикетке.

Корневая гниль бобов

Многие грибы, включая видов Rhizoctonia solani , Pythium и Fusarium solani , образуют вид phaseoli , живут в почве и заражают молодые саженцы или семена бобовых растений. Всходы не прорастают после посадки, когда семена загнивают в почве или молодые саженцы могут отставать в росте.Растения обычно поражаются водянистой мягкой гнилью немного выше или ниже уровня почвы. Корни растения обычно отмирают, а листья желтеют.

Профилактика и лечение: Не сажайте фасоль в низинных, плохо дренированных местах. Сажайте фасоль на приподнятых грядках. Сажайте после того, как почва прогреется до 69 ° F на глубине 4 дюйма. Уменьшите накопление болезней в почве, меняя места в саду, где вы сажаете фасоль или горох с другими овощами. Старайтесь избегать повреждения корневой системы, которое часто происходит во время посадки, выращивания или из-за большой популяции нематод в почве.Удаляйте остатки урожая сразу после сбора урожая. Семена растений, предварительно обработанные каптаном (фунгицидом).

Таблица 1. Некоторые устойчивые к болезням сорта для Южной Каролины.

	Разновидность	Устойчивый
Лимская фасоль	«Джексон Уандер-АР»	Частично устойчив к антракнозу.
Полюсная фасоль	«Кентукки 191»	Устойчив к ржавчине.
Snap Bean	«Дерби», «Провайдер»	Устойчив к Вирусу общей мозаики фасоли .
Южный горох	«Mississippi Silver», «Mississippi Purple»	Устойчив к вирусу черноглазой мозаики вигны и фузариозному увяданию.

Ржавчина

Ржавчина фасоли – это в основном болезнь листьев фасоли, при которой на нижней поверхности листа образуются пятна цвета ржавчины.Сильно зараженные листья желтеют, вянут, а затем опадают. Стебли и стручки также могут быть инфицированы. Это заболевание вызывается грибком Uromyces appendiculaters . Поражает большинство видов фасоли во влажных условиях.

Профилактика и лечение: Гриб выживает зимой в почве, на растительных остатках и даже на столбах, использовавшихся в прошлом году. В садах, где ржавчина была сильной, важен севооборот. Когда растения начинают цвести, серу или хлороталонил можно еженедельно опрыскивать только фасолью и стручковой фасолью.Не наносите хлороталонил на фасоль лима (сливочное масло). Подождите семь дней между опрыскиванием и сбором урожая при использовании хлороталонила на фасоли и 14 дней на южном горохе. Хлороталонил дает отличный контроль над ржавчиной, а сера дает хороший контроль. Распыляйте хлороталонил с 7-дневными интервалами, а серу с 10-дневными интервалами. Наносите химические вещества в соответствии с указаниями на этикетке.

Бактериальные болезни

Существует два широко распространенных бактериальных ожога, поражающих большинство видов бобов, – фитофтороз ( Xanthomonas campestris pathovar phaseoli ) и ореол ( Pseudomonas syringae pathovar phaseolicola ).Стебли, листья и плоды фасоли могут быть инфицированы любым заболеванием. Дождь и сырая погода способствуют развитию болезни.

Ореол обычно возникает при низких температурах. Светлые зеленовато-желтые круги, похожие на ореол, образуются вокруг коричневого пятна или поражения на растении. С возрастом поражения могут объединяться, так как лист желтеет и медленно отмирает. Поражения стебля выглядят как длинные красноватые пятна.

Листья, пораженные фитофторозом, становятся коричневыми и быстро опадают с растения.Стручки, инфицированные обыкновенной гнилью, не имеют зеленовато-желтого ореола вокруг зараженного пятна или поражения. Болезнь встречается чаще всего в теплую погоду.

Профилактика и лечение: Обе эти болезни возникают из-за зараженных семян. Болезни легко распространяются при наличии влаги. Избегайте полива сверху и не трогайте растения, когда листва мокрая. На растительных остатках бактерии могут жить в почве два года. Не сажайте фасоль в одном и том же месте чаще, чем раз в три года.Покупайте новые семена каждый год. Фунгициды меди можно применять с десятидневным интервалом. Подождите один день между опрыскиванием и сбором урожая.

Вирусы мозаики

Вирусы мозаики, у которых на листьях видны резко очерченные участки необычной окраски, могут встречаться в фасоли. Возбудителями этих симптомов могут быть дисбаланс питательных веществ, повреждение гербицидом или инфекция, вызванная одним из нескольких вирусов. В Южной Каролине вирусы, обычно поражающие фасоль, – это вирус желтой мозаики фасоли, вирус общей мозаики фасоли и вирус желтой жилки клевера .Южный горох может быть инфицирован вирусом мозаики, переносимой тлей вейника , вирусом мозаики фасоли и некоторыми другими. Невозможно различить вирусы только по симптомам. Лабораторные тесты (ИФА) необходимы для идентификации вирусов и подтверждения того, что они могут быть причиной мозаичных симптомов.

Профилактика и лечение: Для этих проблем нет рекомендуемых химических средств контроля. Многие из этих вирусов передаются тлей, а также передаются через семена.По этой причине неразумно копить семена из года в год. Светоотражающая пластиковая мульча может уменьшить болезнь, дезориентируя тлей и, таким образом, не позволяя им питаться бобовыми. Борьба с сорняками в саду и рядом с ним, которые могут занести в сад тлю.

Мучнистая роса

Листья покрыты пятнами порошкообразного нароста от беловатого до сероватого цвета. Заболевание вызывается грибком Erysiphe polygoni . Новообразование выглядит искаженным, скрученным или карликовым, может пожелтеть и опадать.Стручки карликовые и искаженные. Это в основном проблема с фасолью. Мучнистая роса распространяется ветром и дождем.

Профилактика и обработка: Избегайте скучивания растений, оставляя достаточное пространство между рядами. Когда болезнь впервые замечается, спреи или дусты серы рекомендуется использовать для стручковой и зеленой фасоли, а также для южного гороха. Сера дает хороший контроль над мучнистой росой. Применяйте с интервалом от 10 до 14 дней. Не используйте серу для молодых растений и избегайте использования серы для растений, если температура превышает 90 ºF.Наносите химические вещества в соответствии с указаниями на этикетке.

Пятнистость листьев Cercospora

Это грибковое заболевание, вызываемое видами Cercospora , поражает преимущественно нижние листья растений в виде неровных коричневых пятен. Тяжелая инфекция вызывает чрезмерное опадание листьев и задержку роста растения. Инфекция усиливается в периоды продолжительных дождей, высокой влажности и температуры от 75 до 85 ° F.

Профилактика и лечение: Используйте для посадки семена, не пораженные болезнями.После сбора урожая удалите весь мусор в саду. Не сажайте фасоль на одном участке в течение двух-трех лет. Устойчивых к этому заболеванию сортов в домашнем саду нет. Спреи с хлороталонилом дают очень хороший контроль, а спреи с серой дают хороший контроль над пятнистостью листьев Cercospora. Не наносите хлороталонил на фасоль лима (сливочное масло). Подождите семь дней между опрыскиванием и сбором урожая при использовании хлороталонила на фасоли и 14 дней на южном горохе. Наносите химические вещества в соответствии с указаниями на этикетке.

Водянистая мягкая гниль

Маленькие мягкие водянистые пятна, вызванные грибком. Sclerotinia sclerotiorum , встречаются на стеблях, листьях и стручках бобов. Эти пятна быстро увеличиваются в прохладных влажных условиях и сливаются вместе, опоясывая стебель. Зараженные стручки превращаются в мягкую водянистую массу, а затем отмирают и становятся коричневыми. Вскоре зараженные участки покрываются белым грибком.

Профилактика и обработка: Улучшение циркуляции воздуха между растениями и рядами.Слишком большое количество удобрений способствует сильному росту виноградной лозы, создавая области для развития болезни. Для домашнего сада не существует рекомендуемых химических средств контроля.

Таблица 2. Фунгициды для борьбы с болезнями фасоли и южного гороха.

Фунгициды	Примеры брендов и продуктов
Хлороталонил	Бонид Концентрат фунгонила; & RTU ¹ Фертиломный концентрат фунгицидов широкого спектра действия для ландшафта и сада; & RTU ¹ Фунгицидный концентрат GardenTech Daconil; & RTU ¹ Фунгицид для высокопродуктивных овощей, цветов, фруктов и декоративных растений Концентрат для борьбы с болезнями сада Ortho MAX Southern Ag Жидкий фунгицид для декоративных и овощных культур Tiger Brand Daconil
Фунгициды меди	Bonide Liquid Copper Fungicide RTU ¹ Bonide Copper Fungicide Spray or Dust (смачиваемый порошок с сульфатом меди) Медный фунгицидный концентрат Monterey Liqui-Cop для сада (комплекс аммония меди) Southern Ag Жидкий фунгицид меди (комплекс аммония меди) ) Bonide Liquid Copper Concentrate (медное мыло) Camelot Fungicide / Bactericide Concentrate (медное мыло) Концентрат медного мыла для цветов, фруктов и овощей RTU ¹ Natural Guard Copper Soap Liquid Concentrate Fungicide Concentrate; И RTU ¹
Сера	Bonide Sulfur Plant Фунгицид (пыль или спрей) Ferti-lome Dusting Sulfur (также смачиваемый для опрыскивания) Высокоэффективная смачиваемая сера для опрыскивания (пыль или спрей) Концентрат садовых фунгицидов более безопасного бренда Southern Ag Смачиваемая или пылящая сера
¹ RTU = Готовый к использованию (небольшой распылитель с предварительно замешанным раствором для использования в небольших садах) Для защиты насекомых-опылителей всегда опрыскивайте как можно ближе к вечеру.

Если этот документ не отвечает на ваши вопросы, обратитесь в HGIC по адресу [email protected] или 1-888-656-9988.

Что такое коронная гниль и как с ней бороться

Гниль кроны обычно поражает многие виды растений в саду, включая овощи. Тем не менее, это также может быть проблемой для деревьев и кустарников и часто губительно для растений. Так что же это такое и как остановить гниение кроны, пока не стало слишком поздно?

Что такое болезнь коронной гнили?

Гниль кроны – это заболевание, вызываемое почвенным грибком, который может сохраняться в почве неограниченное время.Этому грибковому заболеванию часто способствуют влажные условия и тяжелые почвы. Хотя симптомы могут отличаться от растения к растению, часто мало что можно сделать после того, как заболевание возникло.

Признаки болезни коронной гнили

В то время как корона или нижний стебель растений, пораженных этим заболеванием, могут проявлять сухое гниение на уровне почвы или рядом с ней, большинство других симптомов часто остаются незамеченными – пока не становится слишком поздно. Гниение может появиться сначала на одной стороне или только на боковых ветвях, а затем распространяется на все растение.Зараженные участки могут быть обесцвеченными, обычно коричневыми или темными, что указывает на мертвую ткань.

По мере прогрессирования гниения кроны растение начинает увядать и быстро погибать, при этом более молодые растения более подвержены гибели. Листва может пожелтеть или даже стать красной или пурпурной. В некоторых случаях рост растений может замедлиться, но они могут продолжать цвести, хотя и немного. У дерева могут образовываться темные участки на коре вокруг кроны, а по краям пораженного участка сочится темный сок.

Как остановить гниение кроны?

Лечить гниль кроны сложно, особенно если она не обнаружена на достаточно ранней стадии, что часто бывает. Обычно вы мало что можете сделать для спасения растений, поэтому важна профилактика.

Как только будут замечены первые признаки гнили кроны, лучше просто вытащить зараженные растения и как можно скорее выбросить их. Вам также необходимо продезинфицировать территорию и окружающую почву, чтобы болезнь не распространилась на близлежащие растения. Обработка тяжелой глинистой почвы поможет решить любые проблемы с дренажем, которые обычно вызывают это заболевание.

Важно избегать чрезмерно влажной почвы вокруг растений и деревьев. Поливайте растения только при необходимости, позволяя высыхать хотя бы верхнему слою почвы между интервалами между поливами. Когда вы все-таки поливаете, поливайте глубоко, чтобы корни растений извлекли максимальную пользу, а вы поливаете реже.

Чередование овощных культур, таких как помидоры, каждые пару сезонов тоже может помочь.

Деревья обычно тоже не выживают, в зависимости от того, насколько сильно они пострадали.Тем не менее, вы можете попробовать срезать пораженную кору и удалить почву от основания дерева до основных корней, чтобы корона высохла.

Использование фунгицидов может помочь предотвратить заболевание, но обычно оказывается неэффективным, если оно полностью подавлено. Чаще всего используются Captan или Aliette. Полейте почву (2 столовые ложки на 1 галлон воды), пока она немного подсохнет, чтобы фунгицид хорошо проник. Повторите это дважды с 30-дневным интервалом.

Бактериальные и грибковые заболевания голубики

Производители голубики на северо-западе Тихоокеанского региона должны выявлять и контролировать ряд бактериальных и грибковых заболеваний, чтобы обеспечить максимально возможный урожай (прибыльный урожай).К счастью, лишь некоторые из болезней, которые встречаются на голубике высокорослой в этом регионе, вызывают значительные потери, если их не остановить.

Вы можете контролировать болезни плодов и листьев с помощью правильного отбора сортов, методов культивирования и фунгицидов. Заболевания стебля и корней контролировать сложнее, но вы можете уменьшить их серьезность, используя здоровый посадочный материал, способствуя хорошему росту растений, старательно удаляя и уничтожая зараженные части растений и выбирая хорошо дренированные участки на полях.Органические производители могут использовать все эти методы, кроме синтетических пестицидов. Уточняйте в своем сертифицирующем агентстве принятые химические приложения.

Бактериальные болезни

Бактериальный рак

Это заболевание вызывается бактерией Pseudomonas syringae pv. syringae и является проблемой в производственных районах к западу от Каскадных гор. Бактериальный рак может быть особенно серьезным для молодых растений в новых насаждениях, поскольку большая часть древесины является сочной и подверженной болезням.Раненые ткани обеспечивают проникновение возбудителя в растение. Весной часто болезнь становится тяжелее после травмы, полученной морозом предыдущей осенью. Атаке подвергаются только трости, произведенные в предыдущем сезоне. Важно обрезать всю больную древесину, как только ее заметят, особенно перед осенними дождями. Если возможно, подрезайте чувствительные сорта в сухую погоду. Избегайте внесения азотных удобрений в конце лета, так как это может привести к травмам зимой. Некоторые продукты можно использовать для управления химическими веществами, но все они содержат медь в качестве активного ингредиента.Множественные применения, низкие ставки или и то, и другое способствуют устойчивости к этим продуктам. Распылите дважды, сначала перед осенними дождями примерно в первую неделю октября, а затем еще раз через четыре недели.

Коронный галл

Венечный галл в чернике вызывается почвенной бактерией Agrobacterium tumefacien s. Agrobacterium заражается через раны на стеблях и корнях, вызывая образование узловатых галлов. Патоген распространяется через брызги дождя, поливную воду, зараженные инструменты и оборудование, а также через зараженные черенки или прививочный материал.Борьба с болезнями начинается с проверки поступающего в питомник поголовья. Откажитесь от растений, у которых есть галлы. Если возможно, избегайте посадки на полях, где Agrobacterium были проблемой. Инокулят на зараженных полях можно уменьшить, но не полностью устранить с помощью:

Очередь на травы или зерновые культуры не менее двух-трех лет.
Соляризация почвы.
Фумигация почвы перед пересадкой черники.

Биологический контроль с помощью штаммов Agrobacterium radiobacter K84 или K1026 может дополнительно защитить новые растения в течение первого года после посадки.На укорененных полях, где, как известно, присутствует патоген, обрезайте только в сухую погоду и часто дезинфицируйте оборудование для обрезки. Обрежьте и уничтожьте образовавшиеся галлы.

Грибковые болезни под землей

Корневая гниль Armillaria

Корневая гниль Armillaria голубики вызывается несколькими видами, включая Armillaria mellea и Armillaria gallica . Это почвенные грибы, которые заражаются через корни и могут поражать множество различных растений-хозяев.Чаще всего они встречаются на землях, недавно очищенных от местной растительности, поэтому лучше избегать этих участков для новых посадок черники. В первую очередь возбудитель распространяется путем образования ризоморфов – черных шнуровидных структур, которые растут от растения к растению через почву.

Симптомы болезни начинаются с задержки роста и обесцвечивания листьев и прогрессируют до увядания листьев и гибели тростника. Диагностические белые мицелиальные вееры производятся под корой пораженных растений (для наблюдения соскребают кору отмирающих тростников), а иногда осенью обнаруживаются грозди грибов.

Контроль лучше всего достигается избеганием. Не сажайте на участках, недавно очищенных от естественной лесной растительности. Если необходимо использовать недавно очищенный участок, удалите как можно больше древесной растительности, включая корни, хотя лучше всего оставить землю под паром на несколько лет перед посадкой, поскольку заглубленные древесные остатки служат источником инокулята. Фумигация почвы также может помочь уменьшить количество посевов, но все крупные древесные корни необходимо заранее удалить из почвы для достижения максимальной эффективности. Если болезнь развивается в уже заложенных насаждениях, зараженные растения необходимо выкорчевать и сжечь.Удалите как можно больше корневой системы и не пересаживайте в местах, где были обнаружены зараженные растения.

Корневая гниль Phytophthora

Корневая гниль Phytophthora вызывается почвенным патогеном. Phytophthora cinnamomi . Это патоген для теплой погоды, который плохо переносится там, где зимой почвы сильно промерзают.

Имеет широкий спектр хозяев, способных заразить многие виды деревьев и кустарников. Phytophthora cinnamomi распространяется в зараженной воде, почве и на зараженных питомниках.Попав в почву, он может жить долгие годы. В периоды высокой влажности почвы образующиеся споры плывут к ближайшим корням, где и происходит заражение. Затем гниль может перейти от тонкой корневой системы к более крупным корням и, в тяжелых случаях, к стеблям.

Симптомы обычно наиболее тяжелы для молодых растений и включают задержку роста, хлороз и ожог. При высокой влажности почвы и высоких температурах может произойти увядание и гибель тростника. Однако более старые растения с большими корневыми резервами могут пережить болезнь годами.

Когда патоген оказывается в поле, его практически невозможно искоренить. Проверяйте весь поступающий в питомник материал на предмет заражения и отбраковывайте все растения, которые кажутся больными. Поскольку Phytophthora в основном представляет собой проблему влажных участков, выбирайте поля с хорошим дренажем, избегайте тяжелых почв с высоким содержанием глины, используйте дождевальные или микроспрейные оросительные системы вместо капельных и не допускайте чрезмерного полива. Повышенные грядки, дренажные плитки и добавка компоста также могут улучшить аэрацию почвы.

Системные фунгициды помогают защитить новые посадки от инфекции при наличии патогена.Однако после прекращения нанесения патоген может возобновить рост и вызвать повреждение. В системах органического производства внесение гипсовой добавки в почву из расчета 1-10 т / акр может снизить инфекцию, но не в такой степени, как применение фунгицидов.

Также доступны сорта с некоторой устойчивостью к патогену. Мульчирование компостом из опилок или мульчи из коры вместо мульчи из черных сорняков может уменьшить инфекцию, сохраняя более прохладную почву. Коврик из черных сорняков поддерживает более высокую температуру почвы, благоприятную для патогена.Наконец, периодически осматривайте поля, выкапывайте и уничтожайте растения со смертностью более 50%.

Наземные грибковые болезни

Альтернативная гниль плодов

Грибок Alternaria tenuissima вызвал серьезные потери на некоторых полях северо-запада Тихого океана, хотя он не так распространен, как спелая гниль. Гриб зимует в виде мицелия и спор в старых засохших ягодах, мертвых веточках урожая прошлого сезона и на других растительных остатках. Заражение может произойти в любое время между поздним цветением и созреванием плодов.

Инфекция остается незаметной (латентной) до созревания плодов. Заболевание часто развивается при хранении или транспортировке на рынок. Поврежденные плоды могут быть покрыты черноватой или темно-зеленоватой массой спор, которая придает поверхности ягоды тусклый оттенок. Хотя ягоды могут быть сухими в поле, гниль может стать водянистой при хранении собранных плодов.

Своевременно собирайте урожай, чтобы не допустить перезревания плодов.
Не собирайте и не трогайте влажные фрукты.
При ручной уборке меньше гнили, чем при машинной уборке.
Избегайте травмирования или ушибов фруктов во время сбора урожая.
Быстро охладите ягоды после сбора урожая.
Часто очищайте ковши, упаковочные линии и инспекционные ленты от растительного мусора.

Широкий спектр синтетических фунгицидов зарегистрирован для использования после полного цветения, когда ягоды развиваются. Приложения Bloom оказались не очень эффективными.

Ботритис

Грибок Botrytis cinerea выживает как склероции (устойчивая структура выживания) и спящий мицелий на мертвых ветках кустов и обрезках.Споры распространяются главным образом ветром, но также и брызгами воды.

Восприимчивость наиболее высока во время цветения и снова перед уборкой урожая. Более восприимчивы сорта, которые имеют тенденцию сохранять цветочные структуры в течение длительного периода. Также легко заражаются кончики веток, погибшие из-за низких зимних температур. Цветки черники приобретают коричневый цвет, пропитываются водой и погибают. Соцветия могут быть покрыты плотными сероватыми порошкообразными массами спор Botrytis . Инфекции могут быстро перемещаться по цветкам и часто разрушать всю структуру цветка.Болезнь также может переходить из цветков обратно в древесину, дающую плоды.

Зараженные суккулентные ветки сначала становятся коричневыми или черными, а затем отбеливаются до желтовато-коричневого или серого цвета. Симптомы можно увидеть после травмы зимой или до распускания цветочных бутонов. При посадке на новое поле разместите растения для хорошей циркуляции воздуха и быстрого высыхания. Ежегодно обрезайте, чтобы удалить зараженные ветки и открыть навес для хорошей циркуляции воздуха. Отрегулируйте время или частоту верхнего полива, чтобы надземные части растения оставались сухими.Капельное орошение также сохранит цветы и надземные части растений сухими. Собирайте фрукты на правильной стадии созревания и как можно скорее перемещайте собранные фрукты в холодное хранилище.

Большое количество синтетических и некоторых органических фунгицидов зарегистрировано для использования с начала цветения до конца цветения. Обработка перед сбором урожая полезна для борьбы с гнилью плодов после сбора урожая.

Язвенная болезнь Fusicoccum (или иногда еще называемая язвой Годронии)

Гриб Fusicoccum putrefaciens может мешать новым посадкам в Британской Колумбии и Вашингтоне.Это менее серьезно на укоренившихся полях, потому что может быть заражена только новая древесина. Однако с конца 1980-х годов заболеваемость в более старых областях растет.

Зимует гриб в язвах на стеблях и кронах пораженных растений. Конидии выделяются из пикнидий во влажную погоду и разлетаются проливным дождем. С марта по июнь конидии поражают стебли в основном на рубцах листьев. Естественные отверстия в коре также могут служить очагами заражения. Ранней весной инфекции появляются на стеблях текущего года, на участках почек или на поврежденных участках в виде небольших красновато-коричневых поражений.По мере увеличения язвы центры обычно становятся серыми, а края – красновато-коричневыми или темно-коричневыми, придавая язве вид «бычьего глаза».

Маленькие темные пикниды, похожие на прыщики, часто встречаются в язве. Покупайте здоровый сертифицированный посадочный материал и не используйте растения с поврежденными ветвями. Санитария имеет решающее значение для успешного управления. Если обнаружены язвы, подрежьте и уничтожьте поврежденные ветви. Избегайте полива сверху, по возможности используйте капельный. Фунгициды для борьбы не зарегистрированы.Исследования в Британской Колумбии показывают, что эффективны фунгициды широкого спектра действия с множественными механизмами действия, используемые для борьбы с другими заболеваниями. Управление другими заболеваниями весной может косвенно способствовать борьбе с этим заболеванием.

Мумия ягодная

Гриб Monilinia Vacinii-corymbosi зимует в мумифицированных плодах (склероции) на земле. Ранней весной, примерно в то время, когда начинают распускаться почки, из зимующих мумий на поверхности почвы или вблизи нее вырастают грибковые плодовые чашечки (апотеции).Аскоспоры апотеций поражают листья и цветы вскоре после распускания бутонов.

Зараженные цветы становятся коричневыми и засыхают, как если бы они были заморожены. Листья и побеги, растущие из недавно открывшихся листовых почек, чернеют в центре и в конечном итоге увядают и отмирают. Примерно через три недели после первичного заражения на пораженных гнилью цветоножках и листьях появляется коричневато-серая масса спор. Эти споры разносятся ветром, дождем и различными насекомыми-опылителями к здоровым цветкам.

Цветы наиболее восприимчивы, когда они распускаются.При раннем развитии ягод больные плоды выглядят как здоровые; однако при разрезании внутри плодолистиков можно увидеть губчатый белый грибок. По мере того, как ягоды достигают зрелости, зараженные ягоды приобретают красновато-коричневый или коричневый цвет в отличие от восково-зеленого цвета здоровых фруктов. Многие больные ягоды опадают до того, как будут собраны здоровые ягоды. Зрелые мумифицированные ягоды серые, сморщенные, твердые.

Выращивать устойчивые сорта и удалять из смешанных посадок такие восприимчивые сорта, как «Беркли».Нарушение развития апотециев с помощью физических или химических методов может помочь в общем управлении ягодным мумие. Осенью, до опадания листьев, неглубоко культивируйте, чтобы закопать мумии. Ранней весной между распусканием почек и цветением уничтожьте развивающиеся апотеции, взорвав почву под растениями или в переулках, сгребая или обрабатывая почву. Некоторые производители тянут цепи по земле, чтобы помешать развитию апотеций.

Соберите и уничтожьте мумифицированные фрукты с кустов, прежде чем они упадут на землю.Эта практика может занять несколько лет, прежде чем можно будет получить выгоду, но она эффективно используется некоторыми производителями органических продуктов. Перед переездом на новое поле удалите и уничтожьте растительный мусор, который скапливается на комбайнах. Также весной уничтожьте все кучи отбраковки возле упаковочных цехов. Зарегистрировано большое количество синтетических и некоторых органических фунгицидов для защиты соцветий и листвы от распускания почек до конца цветения.

Спелая гниль (иногда еще называемая антракнозом)

Грибок Colletotrichum acutatum может появиться на плодах до сбора урожая (спелая гниль), но чаще проявляется как послеуборочная гниль.Теплые влажные условия способствуют распространению и накоплению болезней. Споры распространяются проливным дождем или орошением.

Заражение может произойти в любое время во время цветения и развития ягод. Инфекция ягод остается незаметной (латентной) до тех пор, пока плоды почти не созреют. Сначала может наблюдаться поражение кончиков побегов. Затем некоторые цветы становятся коричневыми или черными.

По мере созревания зараженных ягод конец цветка может размягчиться и сморщиться. В теплых и дождливых условиях на зараженных ягодах образуются споровые массы лососевого цвета.Однако до сбора урожая также может не быть признаков заболевания. После сбора урожая споровые массы быстро образуются на инфицированных плодах, когда они хранятся в покрытых целлофаном корзинах или в пластиковых пакетах-раскладушках.

Сочетание культурных и химических практик помогает бороться с потерями от этой болезни. Обрезайте кусты, чтобы обеспечить достаточный приток воздуха и сократить время высыхания после намокания. Избегайте полива сверху или применяйте так, чтобы растения не были влажными в течение длительного периода времени. Снизьте температуру собранных фруктов как можно скорее после сбора.Зарегистрированы различные синтетические фунгициды для использования во время цветения. Применение может потребоваться после цветения, особенно в влажные годы.

Серебряный лист

Серебряный лист был впервые подтвержден в 2014 г. на голубике «Draper» и «Liberty», хотя образцы с этими симптомами наблюдались с 2009 г. Грибок ( Chondrostereum purpureum ) поражает порезанные или раненые стебли и конечности широких растений. разнообразие растений, в том числе черника.

Маленькие кронштейновидные плодовые тела образуются осенью и зимой во влажную погоду.Споры разлетаются на много миль, прорастают и попадают в свежие поверхностные раны, такие как порезы при обрезке, механические травмы, зимние травмы или повреждения насекомыми. Порезы после обрезки наиболее уязвимы в течение недели после ранения.

После заражения грибок разрастается до корневой кроны куста. Летом верхняя поверхность молодых листьев становится серебристой. Симптомы могут начаться на одной из двух ветвей, которые демонстрируют замедленный рост и умирают через два или три сезона. Новые ветви того же растения продолжают проявлять симптомы до тех пор, пока не будет поражен весь куст.

Ядро инфицированных стеблей может стать коричневым или иметь концентрические кольца обесцвечивания от пурпурного до коричневого. Это изменение цвета более выражено у основания кустов и ветвей. Выбирайте и уничтожайте симптоматические растения. Уничтожьте всю мертвую древесину, удаленную с полей Draper. Сожгите обрезки, потому что грибок плодоносит только на мертвой древесине, а сучья при обрезке часто являются источником повторного заражения других плодовых систем.

Фитофтороз

Грибок Phomopsis Vacinii зимует в зараженных растительных остатках.Весной споры распространяются из плодовых тел (пикнидий), внедрившихся в больные ткани, под воздействием дождевых брызг и поливной воды. Заражение происходит через цветочные почки от распускания почек до распускания.

Болезнь распространяется от цветов на побеги и ветки. Грибок также может заразиться через травмы, такие как раны от обрезки, уборочного инвентаря, морозные трещины и травмы гербицидами, а также вызывает опоясывающие язвы. Язвы могут присутствовать в основании инфицированных прутьев. Язвы представляют собой удлиненные плоские участки, покрытые небольшими плодовыми телами (пикнидами), которые образуют споры.

Зараженные стебли вянут летом, и листья раньше меняют окраску, вызывая появление красных флажков. Покупайте здоровый посадочный материал и не используйте растения с поврежденными ветвями. Обеспечьте адекватное расстояние между растениями и размер навеса, чтобы обеспечить хорошую циркуляцию воздуха. Обрежьте, удалите и уничтожьте зараженные и мертвые ветки. Избегайте ранения и травм растений. Поощряйте растения закаливаться зимой, чтобы не повредить их морозами. Зарегистрированы различные синтетические фунгициды для использования во время цветения.Грибок может быть активен в любое время весеннего дождя от распускания почек до сбора урожая, но сосредоточьтесь на внесении во время цветения.

Незначительные грибковые заболевания

Обычно это не проблема, но имейте в виду, что эти заболевания могут вызывать проблемы в определенных ситуациях:

Двойное пятно

Гриб Dothichiza caroliniana вызывает в начале лета примерно круглые пятна на листьях от светло-коричневого до серого цвета с темно-коричневым кольцом. Никакого контроля не рекомендуется, если заболеваемость не высока.Фунгициды, применяемые для борьбы с гнилью плодов, также должны способствовать уменьшению двойного пятна.

Листовая ржавчина

Болезнь вызывается грибком Pucciniastrum Vacinii и может поражать все виды Vaccinium. Альтернативным хозяином ржавчины в этом регионе является болиголов (западный или тихоокеанский болиголов, Tsuga heterophylla , и горный или черный болиголов, T. mertensiana).

Споры образуются на нижней поверхности листа в виде желтовато-оранжевых пустул, которые с возрастом становятся ржаво-красными.

Мучнистая роса

Мучнистая роса вызывается Microsphaera alni . Поскольку это заболевание обычно развивается после сбора большей части плодов, оно мало влияет на урожай, за исключением случаев, когда как частота, так и тяжесть заболевания очень высоки.

Язва стебля

Заболевание, вызываемое Botryosphaeria corticis , не было проблемой на северо-западе Тихого океана, но было обнаружено в Орегоне. Красноватые конические вздутия появляются летом и падают на тростниках текущего года.Повреждения увеличиваются и покрываются трещинами на втором году жизни, в результате чего трость становится шероховатой и покрытой волдырями. Обрезайте и уничтожьте зараженные ветки.

Язвы веточки

Грибок Sporocadus lichenicola может инфицировать растения черники, пострадавшие от зимних травм, солнечных ожогов или повреждений от других источников. Грибок спорадически обнаруживали в долинах Уилламетт и Худ-Ривер в Орегоне. Веточки имеют множественные серо-белые язвы с красноватыми краями, связанными с узлами, и варьируются от 1 см до всей длины веточки.Приветствуется тактика, которая сводит к минимуму зимние или другие травмы растений.

Ведьмин метла

Заболевание вызывается ржавчиной грибком Pucciniastrum geoppertianum . Стебли набухают и сильно разветвляются, что создает эффект ведьмовой метлы. Истинные ели ( Abies sp.) Являются альтернативными хозяевами. Оба хозяина необходимы грибку для завершения своего жизненного цикла. Поскольку грибок становится системным и многолетним, единственный метод борьбы – удаление и уничтожение инфицированных растений.

Список литературы

Бристоу, П.Р. и Виндон, Г.Э. 1998. Эпидемиология плодовой гнили Alternaria на северо-западе Тихого океана. С. 176-179. В W.O. Клайн ,. и J.R. Ballington (ред.). Труды 8-й Североамериканской конференции специалистов по исследованию голубики и распространению сельскохозяйственных знаний. 27-29 мая 1998 г. Уилмингтон, Северная Каролина. 293 с.
Брыла, Д. и Линдерман, Р. 2007. Влияние метода орошения и количества поливной воды на заражение Phytophthora и Pythium и серьезность корневой гнили у голубики высокорослой. HortScience 42: 1463-1467.
Кэнфилд, М.Л., Патнэм, М.Л. Уайт, T.J. и Мур, Л. В. 1995. Выделение Agrobacterium tumefaciens из черники (Vaccinium corymbosum). Фитопатология 85: 1194 (аннотация).
Ehlenfeldt, M.K., Polashock, J.J., Stretch, A.W. и Kramer, M. 2010. Ранжирование культивируемой черники по заболеваемости мумие ягод и заражению плодов с использованием повторной выборки и анализа главных компонентов. HortScience 45: 1205-1210.
France, A., Santelices, C., Buddie, A. и Kirk, P. 2009. Серебряный лист: Первое всемирное сообщение о новом и опасном заболевании черники. Материалы 9-го ИС по вакцинам. Acta Horticulturae 810: 341-344.
Полашок, Дж. Дж. И Крамер, М. 2006. Устойчивость сортов голубики к фитофторозу стебля Botryosphaeria и фитофторозу веточек Phomopsis. HortScience , 41: 1457-1461.
Pscheidt, J.W., and Ocamb, C.M., старшие редакторы. 2015. Справочник по борьбе с болезнями растений северо-западного Тихоокеанского региона.Корваллис, Орегон: Государственный университет Орегона.
Rivera, S.A., Zoffoli, J.P., and Latorre, B.A. 2013. Риск заражения и критический период послеуборочной борьбы с серой гнилью (Botrytis cinerea) на голубике в Чили. Завод Дис . 97: 1069-1074
Scheck, H.J., Pscheidt, J.W., and Moore, L.W. 1996. Устойчивость к меди и стрептомицину у штаммов Pseudomonas syringae из питомников Тихоокеанского Северо-Запада. Болезнь растений 80: 1034-1039.
Сердани, М., Кертис М., Кастаньоли С. и Патнэм М. Л. 2010. Первое сообщение о язве на ветвях черники, вызванном Sporocadus lichenicola (Corda) в Орегоне. Онлайн. Прогресс здоровья растений DOI: 10.1094 / PHP-2010-0315-02-BR.
Weingartner, D.P. и Клос, Э.Дж. 1975. Этиология и симптоматология язвенных заболеваний и отмирания голубики высокорослой, вызываемых Godronia (Fusicoccum) cassandrae и Diaporthe (Phomopsis) Vacinii. Фитопатология 65: 105-110.
Верма, Н., Макдональд, Л., и Пунджа, З.К. 2007. Требования к окружающей среде и хозяину для полевого заражения плодов черники Colletotrichum acutatum в Британской Колумбии. Патология растений 56: 107-113.

Борьба с корневой гнилью Phytophthora на рождественских елках ели Fraser

Корневая гниль Phytophthora , вызываемая несколькими видами Phytophthora , с 1960-х годов была связана со значительным повреждением пихты Фрейзера. Phytophthora – это грибоподобный организм, который обитает в почве и поражает многие древесные растения через корни. Он может находиться в состоянии покоя в почве в течение нескольких лет, ожидая восприимчивого хозяина, такого как пихта Фрейзера, и подходящих условий окружающей среды, включая теплые температуры почвы (выше 54 ° F) и насыщенные почвы, чтобы заразить корни растений. Из-за этого постоянства, как только Phytophthora поселяется на участке, этот район, как правило, больше не может быть использован для выращивания пихты Фрейзера, что делает эту болезнь одним из основных ограничивающих факторов для производителей рождественских елок.

Наземные симптомы корневой гнили Phytophthora на пихте Фрейзера включают желто-зеленые иглы, увядание, медленный рост, мертвые ветви и гибель деревьев. Хвоя остается на мертвых ветвях и приобретает коричнево-коричневый цвет. Корни пораженных деревьев также имеют цвет от корицы до черного и не имеют белых кончиков роста. Внешняя поверхность корня может отделяться от внутренней сердцевины, что также называется «отшелушиванием корня», а питающие корни часто отсутствуют.Если разрезать кору ствола дерева, можно увидеть древесину цвета ириски. Часто эти симптомы изначально присутствуют только на одной стороне дерева или на нижних ветвях, поскольку Phytophthora сначала поражает корень и разрастается по направлению к стволу с этой стороны. В конце концов все дерево умрет. Зараженные деревья обычно находятся вместе на поле или на грядке. К сожалению, дерево может быть заражено грибком за несколько месяцев до появления наземных симптомов.

Симптомы дерева могут иметь другие причины, помимо болезней, такие как появление белых личинок, шок от пересадки, ожог удобрений и другие проблемы.Чтобы определить, есть ли у желтеющих или умирающих саженцев или деревьев корневая гниль Phytophthora , свяжитесь с агентом по расширению штата вашего округа для сбора образцов. Эти образцы корней и / или почвы следует отправить в Клинику болезней растений и насекомых (PDIC) в штате Северная Каролина в Роли, чтобы определить, присутствует ли патоген.

Phytophthora Корневая гниль вызывается несколькими видами Phytophthora .В западной части Северной Каролины наиболее важным видом является P. cinnamoni . Часто называемый водяной плесенью, P. cinnamoni производит споры в ответ на почти насыщенную почву. Гриб может оставаться в состоянии покоя в почве в течение многих лет в виде мицелия (грибковых нитей) в инфицированных кусочках корня или в виде хламидоспор, толстостенных покоящихся спор. В течение вегетационного периода, когда почвы теплые и влажные, мицелий или хламидоспоры производят спорангии. Эти структуры в форме лимона вызывают новое заражение либо за счет прорастания и заселения корней, либо за счет высвобождения зооспор, которые образовались внутри каждого спорангия.Зооспоры способны плавать на короткие расстояния с помощью жгутиков и способны направлять свое движение к корням растений-хозяев на основе химической аттрации.

Патоген может быть занесен в поле через зараженное оборудование, с зараженным питомником или с водными стоками с близлежащих зараженных участков. Из них пересадка инфицированных сеянцев вносит большой вклад в заболеваемость. Производители, привозящие трансплантаты из других штатов, могут также завезти новые виды Phytophthora в западную часть Северной Каролины.

Борьба с корневой гнилью Phytophthora требует комплексного подхода к борьбе с вредителями. Никакая единственная стратегия контроля не предотвратит или не сдержит это заболевание. Как и в случае с большинством болезней растений, лучший контроль – это здоровые саженцы и трансплантаты, а также правильный выбор участка. Если деревья заражены Phytophthora , руководство должно перейти к методам, которые уменьшают распространение болезни и минимизируют финансовые потери.Каждый шаг, описанный в этой заметке, поможет снизить риск заражения и распространения этой болезни.

ПЕРВЫЙ ШАГ: ЧИСТКА РАССЕЯН / ПЕРЕСАДКИ

Phytophthora Корневая гниль быстро распространяется по семенным грядкам или грядкам саженцев, потому что корни саженцев срастаются близко друг к другу, позволяя грибку перерасти с одного дерева на другое. Грибок может переноситься в поле на зараженных трансплантатах или в них. К сожалению, трансплантат может выглядеть здоровым в течение нескольких месяцев после заражения.

Чтобы обеспечить максимально чистую трансплантацию, выполните следующие действия:

Выберите участок для рассады или грядки для пересадки, где никогда не было случаев корневой гнили Phytophthora . Грядки следует располагать в месте, где они не будут затоплены, где вода не будет стекать через грядки и где почва неплотная или с высоким содержанием глины.
Подготовьте приподнятые грядки высотой 6-8 дюймов для увеличения отвода воды. Следует тщательно подготовить почву, чтобы разбить все комья и позволить растительному материалу разложиться.
Окурить почву перед посевом или посадкой бромистым метилом или другим меченым фумигантом для почвы. Это уменьшит количество грибка в почве. При любом лечении необходимо соблюдать инструкции на этикетке.
Орошение семенных грядок и пересаженных растений колодезной водой. Вода из фермерских прудов, ручьев и рек может быть загрязнена спорами Phytophthora , которые могут инфицировать растения.
Используйте фунгицид Subdue MAXX весной и осенью, чтобы предотвратить развитие болезни.Нанесите 2 ¹ ⁄ ₂ пинт Subdue MAXX по крайней мере в 50 галлонах воды на акр на грядках с семенами и 5 пинт Subdue MAXX по крайней мере в 50 галлонах воды на акр в грядках для пересадки. Рассмотрите возможность чередования с другим фунгицидом, например, Aliette. Aliette следует наносить на листву до стекания, используя 5 фунтов продукта на 100 галлонов воды. (Примечание: ожидание использования Subdue MAXX до тех пор, пока деревья не начнут умирать от Phytophthora , это даст вам только ложное чувство безопасности.Subdue MAXX будет защищать живые ткани, пока дозировка остается в растении. Однако когда он истощается, растение снова оказывается в опасности. Subdue MAXX не удаляет Phytophthora из почвы или от мертвых корней. Как только деревья переместятся в поле и больше не будут обрабатываться Subdue MAXX, грибок снова станет активным, и деревья могут начать умирать).
Покупайте саженцы и саженцы только у надежных дилеров. Не покупайте растения с грядок с мертвыми или умирающими растениями.
Не сажайте трансплантаты, если корни обесцвечены и обнаруживают «опадание корней».

Если диагностирована Phytophthora и больные сеянцы изолированы в одном углу или секции грядки для пересадки, вы все равно сможете использовать растения на остальной части грядки или соседних грядках. Свяжитесь с представителем вашего округа, чтобы помочь вам определить, безопасно ли использовать растения с незатронутых частей грядки. Помните, что внешне зеленое и здоровое растение может быть заражено.

ВТОРОЙ ШАГ: ВЫБОР МЕСТОПОЛОЖЕНИЯ И ОЧИСТКА МЕСТОРОЖДЕНИЯ

Достаточно пропитать почву в течение нескольких часов, чтобы Phytophthora заразил корни. Пихту Фрейзера следует сажать только на тех полях, где вода быстро стекает через почву, а также быстро стекает с поля. Изучите потенциальное поле для любых участков, где вода собирается или стекает. Есть ли источники влажной погоды? Водосточная труба выходит на поле? При прокладке полевых дорог убедитесь, что проблем с отводом воды не возникнет.Во время сильного дождя может потребоваться съездить на участок, чтобы понаблюдать за отводом воды.

Изучите почву на потенциальных участках поля, чтобы определить, насколько легко вода будет стекать через профиль почвы. Высокое содержание глины снижает поток воды и дольше удерживает воду. Не только глина в верхнем слое почвы является потенциальной проблемой, но и глина в недрах. Твердые карнизы и неглубокие почвы замедляют течение воды. Уплотненная почва также удерживает больше воды и замедляет сток воды через почву. В крупнейшем полевом исследовании пихты Фрейзера на более чем 250 участках, проведенном Государственным университетом Северной Каролины, содержание глины в подпочве и неглубокая глубина почвы были двумя наиболее важными факторами для определения распространенности Phytophthora .

Если поля должны быть очищены от кустарника с помощью тяжелого оборудования, следует проявлять особую осторожность, чтобы уменьшить уплотнение почвы и потерю верхнего слоя почвы, поскольку это увеличивает риск корневой гнили Phytophthora . Не используйте тяжелую технику, когда почва влажная. Не выталкивайте верхний слой почвы с участка. Посейте в поле покровную культуру, чтобы восстановить структуру почвы после расчистки до посадки деревьев.

Phytophthora может инфицировать несколько сотен видов растений, включая красные почки, кизил, рододендроны, горный лавр, белые сосны и жимолость.Существует небольшая вероятность того, что в лесных массивах, расчищенных для выращивания пихты Фрейзера, уже есть грибок в почве. Кроме того, производители, выращивающие пихту Фрейзера в старых яблоневых садах или где яблони росли на старых пастбищах, столкнулись с проблемами с Phytophthora . Несколько видов Phytophthora связаны с корнями яблони и, по-видимому, заражают посаженные поблизости растения Frasers. Трава и клевер не являются хозяевами, и Phytophthora не должны присутствовать на старых пастбищах.

ТРЕТИЙ ШАГ: СОХРАНЕНИЕ ЗДОРОВЫХ КОРНЕЙ

Гриб Phytophthora привлекает поврежденные корни.Сохранение здоровых корней может помочь уменьшить развитие Phytophthora . Следующие меры улучшат здоровье корней:

Не сажайте саженцы пихты Фрейзера на глубину более 1 дюйма над корневой шейкой. Если поместить большую корневую систему в маленькую посадочную ямку, корни вырастут в форме буквы J, что ослабит рост корней. Избегайте чрезмерной обрезки корней при посадке.
Равномерно распределите удобрения. Груды удобрений на земле повредят корни, растущие прямо под ними.
Ограничить использование Симазина. Высокие дозы Симазина повредят корни.
Позвольте почвенному покрову прорасти между деревьями, чтобы почва оставалась прохладной. Корни пихты Фрейзера будут расти ближе к поверхности почвы, где больше кислорода и меньше воды. Свяжитесь с агентом по расширению вашего округа, чтобы узнать больше об управлении почвенным покровом с помощью подавляющих доз послевсходовых гербицидов.

ЧЕТВЕРТЫЙ ШАГ: ЧТО ДЕЛАТЬ, ЕСЛИ PHYTOPHTHORA РАЗВИВАЕТСЯ

Даже при осторожном уходе может развиться корневая гниль Phytophthora , особенно после сильных дождей или наводнений.Следующие шаги могут снизить распространение болезней и потерю деревьев:

Карантинные участки поля, где деревья умирают с Phytophthora . Почва из этих зараженных участков может нести споры грибка. При работе на деревьях в последнюю очередь посещайте зараженные участки. Не переносите грязь на ботинках или снаряжении на участки поля, где деревья не умирают. Смывайте почву с обуви или оборудования водой с хлорным отбеливателем при переходе с загрязненной фермы на чистую. Держите почвенный покров на карантинных участках, чтобы уменьшить распространение почвы, зараженной грибком, в чистые места.

Воду, стекающую через поле, по возможности следует отводить, чтобы уменьшить распространение болезни.
Ранняя уборка вблизи пораженных территорий может снизить финансовые потери. Лучше продавать деревья, когда они меньше, чем вы планировали, чем оставлять эти деревья умирать.
Деревья, непосредственно окружающие больные деревья, можно обрабатывать в поле с помощью Subdue MAXX и / или Aliette. Применяйте эти продукты ранней весной и снова в конце лета. Нанесение следует производить за 1-3 дня до ожидаемого дождя.Никогда не наносите Subdue MAXX на пихту, растущую на пойменных участках, в плохо дренированных почвах или вблизи поверхностных вод, так как это может привести к загрязнению ручьев. Эта обработка дорогостоящая и может быть неэффективной, если деревья находятся более чем в году после сбора урожая.
Не пересаживайте пихту Фрейзера на участках, где Frasers погибла из-за корневой гнили Phytophthora . Могут использоваться альтернативные виды, включая ель колючую голубую и ель обыкновенную. Белые сосны также могут быть выращены там, где Frasers был убит корневой гнилью Phytophthora .Однако белые сосны также являются хозяевами, и если популяция грибов высока или участок плохой, они тоже могут погибнуть. Пихта Фрейзера, привитая к корням более устойчивых видов пихты, может выжить в районах, где пихта Фрейзера погибла.

Лучший способ справиться с корневой гнилью Phytophthora – никогда не заразиться ею. Безболезненные саженцы и трансплантаты, а также выбор участка и санитарная обработка продолжают оставаться основой борьбы с корневой гнилью Phytophthora .

Дата публикации: янв.1, 2004
Исправлено: 10 января 2019 г.

Рекомендации по использованию сельскохозяйственных химикатов включены в эту публикацию для удобства читателя. Использование торговых марок и любое упоминание или перечисление коммерческих продуктов или услуг в этой публикации не означает одобрения со стороны NC State University или NC A&T State University или дискриминации в отношении аналогичных продуктов или услуг, не упомянутых. Лица, использующие сельскохозяйственные химикаты, несут ответственность за то, чтобы их предполагаемое использование соответствовало действующим нормам и этикетке продукта.Обязательно получите актуальную информацию о правилах использования и изучите текущую этикетку продукта перед нанесением любого химического вещества. За помощью обращайтесь в местный окружной центр NC Cooperative Extension.

N.C. Cooperative Extension запрещает дискриминацию и домогательства независимо от возраста, цвета кожи, инвалидности, семейного и семейного положения, гендерной идентичности, национального происхождения, политических убеждений, расы, религии, пола (включая беременность), сексуальной ориентации и статуса ветерана.

Бактериальный и грибковый эндофтальмит

Clin Microbiol Rev.2017 Июль; 30 (3): 597–613.

Кафедры медицины и офтальмологии, Гарвардская медицинская школа и Служба инфекционных заболеваний, Массачусетская глазная и ушная больница и Департамент медицины, Массачусетская больница общего профиля, Бостон, штат Массачусетс, США

Соответствующий автор Авторские права © Американское общество микробиологии, 2017 г. .Эту статью цитировали в других статьях в PMC.

РЕЗЮМЕ

Эндофтальмит – это тяжелая глазная инфекция, которая может привести к необратимой потере полезного зрения в пораженном глазу. Большинство случаев являются экзогенными и возникают как осложнение операции по удалению катаракты, интравитреальной инъекции или проникающей травмы глаза. Эндогенный эндофтальмит возникает в результате гематогенного заражения глаза бактериями или грибами, но бактериемия или фунгемия могут быть временными, и у пациентов могут отсутствовать симптомы системной инфекции. Почти у всех пациентов с эндофтальмитом наблюдается ухудшение зрения, а у некоторых также наблюдается боль в глазах.При осмотре глаза обычно выявляется гипопион и внутриглазное воспаление. Диагноз ставится на основании клинических данных и подтверждается культурами стекловидного тела и / или водной жидкости, а в некоторых эндогенных случаях – культурами крови. Методы молекулярной диагностики использовались в исследовательских лабораториях для идентификации патогенов при эндофтальмите и предлагают возможность быстрой диагностики, в том числе в случаях с отрицательным посевом. Интравитреальное введение антибиотиков – важнейший компонент лечения; в некоторых случаях также помогает хирургическая обработка стекловидного тела путем витрэктомии.Визуальный результат частично зависит от возбудителя: коагулазонегативный стафилококковый эндофтальмит имеет лучший прогноз, чем, например, стрептококковый эндофтальмит. Эндофтальмит требует неотложной медицинской помощи, и своевременная диагностика и лечение необходимы для сохранения зрения.

КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: эндофтальмит, бактериальный эндофтальмит, грибковый эндофтальмит, профилактика эндофтальмита, Candida эндофтальмит, блеб-связанный эндофтальмит, эндофтальмит, связанный с кератитом, эндофтальмит, связанный с кератитом, 9, эндофтальмит, большинство из них, эндофтальмит, эндофтальмит, эндофтальмит, эндофтальмит, эндофтальмит, эндофтальмит, эндофтальмит инфекции и могут привести к необратимой слепоте в инфицированном глазу в течение нескольких часов или дней после появления симптомов.Термин «эндофтальмит» относится к инфицированию стекловидного тела и / или воды бактериями или грибами. Внутриглазные инфекции, вызванные вирусами или паразитами, обычно считаются типами увеита, а не эндофтальмита.

Эндофтальмит может быть экзогенным, при котором микробы на поверхности глаза или из внешнего источника попадают в глаз, или эндогенным, возникающим в результате гематогенного посева патогенов во время бактериемии или фунгемии. Большинство случаев эндофтальмита являются экзогенными.Экзогенный эндофтальмит далее делится на несколько категорий, в первую очередь по факторам риска, таким как посткатаракта, посттравматический и связанный с пузырчаткой. Важно определить категорию эндофтальмита, поскольку это влияет на типичное представление, микробиологию и визуальный результат ().

ТАБЛИЦА 1

Основные категории эндофтальмита

7 –80

Категория	Фактор риска	Относительная частота (% всех случаев эндофтальмита)	Основные патогенные микроорганизмы
7
Коагулазонегативные стафилококки (70% случаев), Staphylococcus aureus (10%), стрептококки (9%)
Постинъекция	Интравитреальная инъекция	0–50	Коагулококки отрицательные st streptococci
Посттравматический	Проникающая травма глаза	2–15	Коагулазонегативные стафилококки, Bacillus , стрептококки, грамотрицательные палочки, грибы
Bleb related	0–5	Streptococcus pneumoniae и другие стрептококки ci, энтерококки, Haemophilus influenzae
Связанные с кератитом	Инфекция роговицы	0–10	Грибки ( Aspergillus , Fusarium ) в 50%, S.aureus , стрептококки, Pseudomonas
Эндогенные	Бактериемия или фунгемия	0–20	Klebsiella pneumoniae (особенно в странах Восточной Азии), Candida , streptococureci, S. Escherichia coli

Эндофтальмит встречается редко, и заболеваемость зависит от категории. Например, частота эндофтальмита после операции по удалению катаракты составляет примерно 0,1%, а после проникающей травмы глаза – от 1 до 18%.Послеоперационный и посттравматический эндофтальмит являются основными типами эндофтальмита, наблюдаемыми во всем мире: послеоперационные (в основном посткатарактальные) случаи составляют от 40 до 80%, а посттравматические случаи составляют от 2 до 15% всех случаев эндофтальмита, наблюдаемых в центрах в Бразилии, Англии, Израиле, Иране, Индия, Австралия и Южная Корея (1, –7). Существуют региональные различия: посттравматический эндофтальмит составлял от 40 до 60% всех случаев эндофтальмита, пролеченных в некоторых центрах Египта, Индии и Китая (7, –9).Период времени, включенный в исследование, также влияет на частоту различных типов эндофтальмита. Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США (FDA) одобрило интравитреальные препараты против фактора роста эндотелия сосудов (анти-VEGF) для лечения неоваскулярной возрастной дегенерации желтого пятна в 2004 году, и с тех пор наблюдается быстрое увеличение использования этих и другие интравитреальные инъекции. Некоторые центры сообщают, что постинъекционный эндофтальмит в настоящее время встречается чаще, чем послеоперационный эндофтальмит (3, 10).

ПАТОГЕНЕЗ

Источником патогенов при экзогенном эндофтальмите является поверхность глаза (например, при послеоперационном, постинъекционном, кератитном, пузырчатом или связанном с устройством эндофтальмите) или окружающей среде (например, при посттравматическом эндофтальмите). При эндогенном эндофтальмите источником инфекции является либо преходящий очаг (например, постоянный центральный венозный катетер), либо постоянный (например, абсцесс печени).

Вероятность того, что у пациента разовьется эндофтальмит, зависит от факторов организма, размера посевного материала и факторов патогенов.Бактерии, которые колонизируют конъюнктиву, такие как коагулазонегативные стафилококки, могут быть культивированы из водной жидкости в конце операции примерно в одной трети случаев хирургии катаракты (11, 12), но только от 1 из 500 до 1 из 1000 операций по удалению катаракты. привести к эндофтальмиту, вероятно, из-за способности иммунной системы очищать небольшие инокуляты. Скорее всего, помогает постоянный оборот воды каждые 100 минут; Сообщение с стекловидным телом, которое не регенерируется, во время операции по удалению катаракты увеличивает риск послеоперационного эндофтальмита в 6 раз (13).Большое количество патогенов, попавших в глаз, может нарушить защиту хозяина; Вспышки, возникающие в результате использования зараженного раствора во время операции, например, обычно приводят к частоте атак от 80 до 100%.

Факторы патогенов также играют роль в патогенезе. Бактериемия или фунгемия редко приводят к эндогенному эндофтальмиту (частота <1%), за исключением случаев гипермуковязкости организма (серотип K1 или K2) Klebsiella pneumoniae . Этот организм был связан с абсцессом печени в центрах Восточной Азии, и в 7% случаев развивается эндофтальмит (14).Экспериментальные модели с мышами подтвердили, что глаза, в которых инъецировали Klebsiella с фенотипом гипермуковязкости (HMV), имеют большую потерю функции сетчатки и воспаление, чем глаза, в которых инъецировали HMV-отрицательные штаммы (15). Область magA (ген, связанный с муковязкостью) была связана с образованием капсульного типа K1, преобладающего типа, вызывающего абсцесс печени и метастатические осложнения, такие как эндофтальмит. Бактериофаг, который специфически инфицирует штаммы Klebsiella серотипа K1, был изолирован и может иметь значение для диагностики в будущем (16).При посттравматическом эндофтальмите Bacillus cereus и другие виды Bacillus являются основными патогенами и вызывают молниеносный эндофтальмит с очень плохим визуальным прогнозом. Факторы, которые играют роль в этом разрушении, включают токсины, повреждающие мембраны, такие как гемолизины, сфингомиелиназы и фосфолипазы, факторы вирулентности, регулируемые зависимым от кворума транскрипционным регулятором PlcR, быстрый внутриглазный рост и подвижность бактерий в глазу (17, –20). ). Сами нейтрофилы вызывают повреждение сетчатки, а хемокин CXCL1 и другие факторы способствуют привлечению нейтрофилов и повреждающему воспалению, наблюдаемому во время эндофтальмита Bacillus (21).При эндофтальмите, связанном с пузырями, важным патогеном является Streptococcus pneumoniae , вызывающий тяжелый эндофтальмит; пневмококковая капсула, пневмолизин и автолизин, по-видимому, вносят вклад в патогенез (22, 23).

Биопленки могут играть роль в случаях эндофтальмита, связанного с имплантатами, такими как дренажные устройства при глаукоме, кератопротезы (искусственные роговицы) и, возможно, интраокулярные линзы (ИОЛ). Во время операции по удалению катаракты устанавливаются интраокулярные линзы, и материал ИОЛ может влиять на формирование биопленки.Исследование, сравнивающее адгезию Staphylococcus epidermidis и образование биопленки на 4 типах ИОЛ (полиметилметакрилат, силикон и гидрофильный и гидрофобный акрил), показало, что рост биопленки происходил на всех типах, но между типами наблюдалась значительная разница (гидрофильный акрил имел наименьшее бактериальное связывание, а наибольшее – у силикона) (24). Однако роль биопленок в посткатарактальном эндофтальмите все еще неясна, поскольку биопленки, по-видимому, встречаются на ИОЛ неинфицированных глаз: 19% ИОЛ в глазах, переданных после смерти для трансплантации роговицы, имели бактериальные биопленки (25).

КЛИНИЧЕСКИЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ

Наиболее частым симптомом эндофтальмита является снижение зрения, поражающее почти всех пациентов. Боль или дискомфорт в глазах и красные глаза также являются обычными, хотя и не универсальными жалобами. Системные симптомы, такие как лихорадка, отсутствуют у экзогенных, но часто присутствуют в случаях эндогенного эндофтальмита (26). При осмотре глаза в большинстве случаев (например, в 80% случаев посткатаракты) выявляется гипопион (27), который представляет собой слой лейкоцитов в передней камере ().При обследовании глазного дна выявляется внутриглазное воспаление, которое часто закрывает обзор сетчатки (например, в 80% случаев посткатарактного эндофтальмита вид на сосуды сетчатки не виден) (28).

Гипопион представляет собой слой лейкоцитов в водной оболочке глаза с эндогенным эндофтальмитом S. aureus . (Переиздано из ссылки 66 с разрешения Springer.)

Скорость появления симптомов и тип внутриглазного воспаления могут указывать на бактериальную или грибковую этиологию.Бактериальный эндофтальмит обычно проявляется остро, часто в течение нескольких дней после провоцирующего события, такого как операция по удалению катаракты. Грибковый эндофтальмит обычно протекает в подострой форме с ухудшением симптомов в течение нескольких дней или недель. Внутриглазное воспаление при грибковом эндофтальмите имеет тенденцию возникать в виде «скоплений» в водной и / или стекловидном теле (), в то время как внутриглазное воспаление обычно диффузно при бактериальном эндофтальмите.

Грибковый эндофтальмит из Scedosporium . Обратите внимание на «комковатый» вид внутриглазного воспаления.(Переиздано из ссылки 66 с разрешения Springer.)

ДИАГНОСТИКА

Эндофтальмит – это клинический диагноз, подтвержденный посевом стекловидного тела и / или водной жидкости, а также посевом крови при эндогенном эндофтальмите. Отрицательные посевы не исключают диагноз, поскольку от 20 до 30% случаев эндофтальмита являются отрицательными. Методы молекулярной диагностики продемонстрировали наличие патогена во многих случаях с отрицательным посевом, и эти методы могут сыграть большую роль в диагностике эндофтальмита в будущем.

Отбор проб и методы культивирования

Офтальмолог может взять пробы как водной, так и стекловидного тела. Водный раствор является жидким, примерно 0,3 мл, непрерывно регенерируется, время оборота составляет 100 мин. Напротив, стекловидное тело представляет собой гель объемом примерно 4 мл; он присутствует при рождении и не регенерируется. Небольшие образцы водной (например, 0,1 мл) или стекловидного тела (от 0,2 до 0,3 мл) могут быть получены для посева путем пункционной аспирации в офисе офтальмолога (), хотя некоторые аспираты стекловидного тела являются «сухими» из-за сложности аспирации гель.В качестве альтернативы, некоторые, но не все, стекловидное тело можно удалить хирургическим путем с помощью витрэктомии в операционной (). Эта процедура выполняется с помощью витректора, механизированного инструмента, который быстро разрезает (например, 5000 разрезов в минуту) и аспирирует стекловидное тело, в то время как тургор глаза поддерживается за счет одновременной замены сбалансированным солевым раствором. Во время этой процедуры можно получить неразбавленный «образец биопсии» стекловидного тела для культивирования в начале исследования. Оставшийся образец стекловидного тела разбавляют постоянно вводимым сбалансированным солевым раствором, и эти собранные «смывы» стекловидного тела также отправляют на культивирование.В микробиологических лабораториях специализированных офтальмологических больниц с этими образцами обычно обращаются следующим образом: (i) образец промывочной жидкости объемом 5 мл центрифугируется, а полученный осадок используется для окрашивания по Граму и калькофлуора, и (ii) остальные промывные жидкости ( От 50 до 100 мл) стерильно фильтруют под вакуумом через фильтр 0,45 мкм, затем фильтровальную бумагу разделяют и помещают на чашки с агаром для культивирования.

Взятие пробы стекловидного тела путем аспирации иглой (A) или витрэктомии (B).

Окрашивание по Граму внутриглазной жидкости положительно примерно в 50% случаев бактериального эндофтальмита.Следует проявлять осторожность, чтобы не принять гранулы пигмента за грамположительные кокки (), хотя гранулы пигмента гиперрефрактильны () и, как правило, намного крупнее кокков или имеют форму футбольного мяча. Гранулы пигмента – это гранулы меланина, которые могут высвобождаться из пигментного эпителия радужной оболочки или пигментного эпителия сетчатки во время внутриглазного воспаления.

Окраска по Граму внутриглазного образца, демонстрирующая обилие пигментных гранул, но отсутствие организмов. Гранулы пигмента обычно выглядят пурпурными при окраске по Граму (а) и могут быть ошибочно приняты за грамположительные кокки, если ручка точной фокусировки не вращается вперед и назад, что показывает гиперрефрактильный (медный) цвет гранул пигмента (b).

Культуры положительны примерно в 90% образцов витрэктомии, от 50 до 70% аспиратов стекловидного тела и 40% водных аспиратов. Водные аспираты обычно дают более высокие результаты в случаях эндофтальмита, когда воспаление наиболее выражено в водной среде, например, в случаях вторичной инфекции роговицы.

Методы молекулярной диагностики

ПЦР-тестирование внутриглазных жидкостей может быстро идентифицировать патогены в случаях эндофтальмита, включая случаи с отрицательным посевом.Однако в настоящее время ПЦР-тестирование на бактерии или грибки в образцах воды или стекловидного тела доступно в основном в исследовательских лабораториях. При эндофтальмите к внутриглазным жидкостям применяли несколько типов ПЦР (29). Общепринятый панбактериальный метод ПЦР может занять от 2 до 3 дней и включает амплификацию бактериального гена 16S рРНК с последующим секвенированием амплифицированной ДНК. Пан-бактериальная ПЦР в реальном времени сочетает в себе ПЦР-амплификацию целевой ДНК с одновременным обнаружением амплифицированных продуктов ПЦР; это сокращает время выполнения работ.Мультиплексная ПЦР в реальном времени увеличивает рентабельность тестирования и позволяет одновременно обнаруживать несколько ДНК-мишеней за одну реакцию. Количественная ПЦР в реальном времени может повысить специфичность эндофтальмита за счет определения порогового значения, ниже которого вероятна контаминация, а не истинная инфекция. Об использовании ПЦР для диагностики эндофтальмита впервые сообщалось в 1994 г. (30), и с тех пор в большинстве исследований использовалась обычная ПЦР. Чике и его коллеги отмечают, что ПЦР и традиционные методы культивирования на самом деле дополняют друг друга (29).Они обнаружили, что чувствительность панбактериальной ПЦР 100 образцов из случаев острого посткатарактального эндофтальмита была аналогична чувствительности культивирования, но сочетание этих двух методов позволило идентифицировать виды бактерий в 87% случаев, в том числе в 25% случаев с отрицательными культурами ( 31). Большинство ПЦР-исследований эндофтальмита сосредоточено на бактериальных патогенах, но грибы также могут быть обнаружены путем нацеливания на общую последовательность ДНК рибосом 18S / 28S.

Недавно лаборатория Ван Гелдера применила другой молекулярный метод с аббревиатурой BRiSK (репрезентация биома in silico , кариотипирование) для идентификации любого ДНК-микроба в образце (32).Этот метод выделяет последовательность из 33 пар оснований (п.н.) из каждых 4000 п.н. исходной ДНК в образце, секвенирует эти «метки» из 33 п.н. и сравнивает метки с большой базой данных (GenBank, Национальный центр биотехнологической информации ) всех известных последовательностей ДНК. Методика BRiSK была применена вместе с посевом и 16S-ПЦР для внутриглазных образцов от 21 случая постпроцедурного эндофтальмита (14 положительных посевов) и 7 контрольных образцов в одном исследовании (33). Контрольные случаи были отрицательными на бактерии всеми тремя методами.Среди положительных по культуре случаев эндофтальмита ПЦР и BRiSK идентифицировали тот же или аналогичный вид, что и культура, в 71%, но были ложноотрицательными в 29%. Из 7 отрицательных посевов 2 были положительными на бактерии с помощью BRiSK, но отрицательными с помощью ПЦР. Интересно, что BRiSK идентифицировал небольшой ДНК-вирус, вирус тено-тено (TTV), в 57% случаев эндофтальмита с положительным посевом и 100% случаев эндофтальмита с отрицательным посевом, но ни в одном из контролей. Значение этого открытия неизвестно, и этот вирус, по-видимому, широко распространен среди населения в целом.Исследование, проведенное в России, показало, что 94% здоровых людей имеют 1000 копий генома TTV на 1 мл крови (34).

ПОСЛЕОПЕРАЦИОННЫЙ ЭНДОФТАЛЬМИТ

Острый посткатарактальный эндофтальмит

Острый посткатарактальный эндофтальмит является основным типом эндофтальмита, наблюдаемым во всем мире. Большинство случаев являются бактериальными и примерно в 75% случаев выявляются в течение 1 недели после операции. Пациенты жалуются на снижение зрения (95% случаев), красные глаза (80%) и боль в глазах (75%) (35). Лихорадка отсутствует. Источником инфекции в большинстве случаев является резидентная флора поверхности глаза или кожи век пациента, как показали несколько исследований.Исследование 105 пациентов с коагулазонегативным стафилококковым посткатарактальным эндофтальмитом показало, что внутриглазные изоляты идентичны изолятам из кожи век в 68% случаев (36). В исследовании 98 пациентов, перенесших операцию по удалению катаракты, в Австралии у одного пациента развился послеоперационный эндофтальмит Staphylococcus epidermidis , и изолят был идентичен предоперационному изоляту конъюнктивы пациента по данным гель-электрофореза в импульсном поле (37). Иногда зараженный раствор или материал, используемый во время операции, является источником патогенов, как, например, в недавней вспышке послеоперационного эндофтальмита Fusarium oxysporum после использования загрязненного вязкоупругого материала (38).

Примерно 30% случаев посткатарактального эндофтальмита являются отрицательными по культуре. Среди положительных по культуре случаев грамположительные кокки составляют примерно 95% изолятов, при этом коагулазонегативные стафилококки являются первичными патогенами (70% случаев) (35). Другие патогены включают Staphylococcus aureus (10%), стрептококки (9%), смешанные грамположительные бактерии (5%) и грамотрицательные палочки (6%). Грибковый послеоперационный эндофтальмит встречается редко, за исключением тропических регионов, таких как Индия, где от 10 до 20% случаев вызваны грибками (39, 40).

Лечение острого послеоперационного эндофтальмита включает интравитреальное введение антибиотиков, при этом сначала выполняется витрэктомия в тяжелых или быстро ухудшающихся случаях. И ванкомицин, и цефтазидим вводятся эмпирически при подозрении на наличие бактерий. Пациентам с аллергией на цефтазидим или в случаях, которые, как известно, связаны с устойчивыми к цефтазидиму грамотрицательными бациллами, амикацин можно вводить вместо цефтазидима, хотя в остальном интравитреальные аминогликозиды избегают из-за известного, но очень редкого осложнения инфаркта желтого пятна.Если состояние глаза не улучшается или ухудшается в течение первых 48 часов, может быть выполнена вторая инъекция антибиотиков, обычно в сочетании с витрэктомией, если эта процедура не была проведена при поступлении. Выполнение витрэктомии при поступлении улучшает зрительные результаты на глазах с тяжелым воспалением. Это было продемонстрировано в исследовании Endophthalmitis Vitrectomy Study (EVS), большом проспективном исследовании, опубликованном в 1995 году. В EVS пациенты были рандомизированы для получения витрэктомии плюс интравитреальные антибиотики при поступлении (когорта витрэктомии) или только интравитреальные антибиотики (когорта выборки / биопсии) ( 35).Пациенты с наихудшим зрением (только световосприятие) добились большего успеха, если лечились немедленной витрэктомией: 20% когорты витрэктомии остались с тяжелой потерей зрения по сравнению с 47% когорты выборки / биопсии. Витрэктомия также помогает быстро избавиться от инфекции. Примерно 10% пациентов в EVS потребовалась вторая процедура в течение первой недели, как правило, из-за продолжающегося воспаления, и посевы все еще были положительными в 71% когорты выборки / биопсии, но только у 13% когорты витрэктомии (41).

Системные антибиотики сами по себе не эффективны при лечении бактериального эндофтальмита, и их ценность в качестве дополнительной терапии (в дополнение к интравитреальным антибиотикам и витрэктомии) при послеоперационном и других типах экзогенного бактериального эндофтальмита неизвестна.EVS попыталась ответить на этот вопрос путем рандомизации пациентов с посткатарактальным эндофтальмитом для получения внутривенных (в / в) антибиотиков или нет. К сожалению, антибиотики, выбранные в EVS, в.в. амикацин плюс цефтазидим обладают минимальной активностью в отношении стафилококков, бактерий, ответственных за 80% положительных посевов в исследовании. Кроме того, системный амикацин не проникает через гемато-глазной барьер. Таким образом, единственный вывод, который можно сделать из EVS, заключается в том, что системные амикацин и цефтазидим не принесли пользы.Пока неизвестно, будут ли полезны антибиотики, которые лечат большинство возбудителей эндофтальмита и достигают хороших внутриглазных уровней, поскольку дополнительная терапия. После EVS не проводилось никаких других рандомизированных проспективных исследований для ответа на этот вопрос.

Хронический посткатарактальный эндофтальмит

Хронический посткатарактальный эндофтальмит встречается редко и в большинстве случаев вызван грибками или вялотекущими бактериями, такими как Propionibacterium acnes . Диагноз следует заподозрить у пациентов со стойким воспалением в послеоперационном периоде или у пациента с ошибочным диагнозом «увеит» после операции, даже если воспаление началось через несколько недель.Характер явной реакции на местные кортикостероиды с последующим рецидивом каждый раз при снижении дозы кортикостероидов является обычным явлением, особенно при хроническом бактериальном посткатарактальном эндофтальмите. Ключом к диагнозу хронического грибкового эндофтальмита является «комковатый» вид внутриглазного воспаления, а ключом к диагнозу хронического эндофтальмита P. acnes является наличие белого налета на задней капсуле хрусталика. Диагностика только с помощью аспирата иглой часто бывает отрицательной, и может потребоваться витрэктомия.В случае эндофтальмита P. acnes аспират белой капсульной бляшки часто является образцом, наиболее вероятным для получения положительной культуры.

Лечение посткатарактального грибкового эндофтальмита почти всегда требует удаления ИОЛ в дополнение к внутриглазной инъекции противогрибкового средства (амфотерицина или вориконазола), витрэктомии и системного введения азола. Для системной терапии флуконазол назначают для восприимчивых Candida видов и вориконазол для восприимчивых плесневых грибов и устойчивых к флуконазолу, но чувствительных к вориконазолу Candida видов.Лечение хронического эндофтальмита P. acnes не включает системную терапию, но обычно требует комбинации внутриглазных инъекций антибиотиков плюс хирургическое вмешательство (витрэктомия, капсулэктомия и замена или удаление ИОЛ), поскольку внутриглазные инъекции сами по себе приводят к рецидиву в 70% случаев. корпусов (42).

Поствитрэктомический эндофтальмит

Поствитрэктомический эндофтальмит встречается реже, чем посткатарактальный эндофтальмит, но микробиология схожа с большинством случаев, вызванных коагулазонегативными стафилококками.Витрэктомия выполняется при различных заболеваниях сетчатки (например, при разрывах или отслоении сетчатки, кровоизлиянии в стекловидное тело), и в самых последних исследованиях сообщается, что частота эндофтальмита составляет от 0,02 до 0,06% (43). Методы диагностики и лечения поствитрэктомического эндофтальмита такие же, как и при посткатарактальном эндофтальмите.

Посткератопластика Эндофтальмит

Посткератопластический эндофтальмит – это эндофтальмит, возникший после трансплантации роговицы (кератопластики). Эндофтальмит возникает примерно у 0.2% случаев кератопластики в остром послеоперационном периоде и до 0,7%, если включены более поздние случаи (44, 45). Микробиология варьируется; исследование посткератопластического эндофтальмита, проведенное в Соединенном Королевстве, включая случаи, развивающиеся спустя долгое время после операции, показало, что 31% случаев были вызваны грибками (в основном Candida ), а остальные – Pseudomonas , стрептококками, стафилококками и микобактериальными видами ( 45). Обзор 31 случая с положительным посевом в литературе показал аналогичные результаты: Candida вызывали 33% случаев, стрептококки 27%, стафилококки 20%, энтерококки 10% и Pseudomonas 10% (46).Ободок донорской роговицы, оставшийся после удаления центрального стержня для трансплантации, часто отправляют на культивирование для наблюдения, но ценность этого остается спорной. Однако эта информация может быть важна для Candida : глаз, который получает роговицу, чья донорская культура впоследствии растет. Candida имеет 3% шанс развития эндофтальмита Candida (46). Неизвестно, следует ли лечить такие глаза профилактически противогрибковыми препаратами или просто под наблюдением офтальмолога.Лечение посткератопластического эндофтальмита может потребовать замены инфицированной роговицы в дополнение к внутрикамерным (в водную среду) и / или интравитреальным антибиотикам и витрэктомии (при необходимости).

ПОСТИНЕКЦИОННЫЙ ЭНДОФТАЛЬМИТ

Использование интравитреальных инъекций быстро увеличилось с момента одобрения FDA инъекций против VEGF в 2004 году, как отмечалось выше. Исследование с использованием базы данных Medicare показало, что количество инъекций в стекловидное тело увеличилось с 83 000 в 2004 г. до 2,4 млн в 2012 г. (47).Большинство инъекций включают использование агентов против VEGF, которые вводятся в первую очередь при неоваскулярной возрастной дегенерации желтого пятна (AMD), но также назначаются при диабетической ретинопатии и других показаниях. Риск эндофтальмита составляет примерно 0,05% на одну инъекцию (48), и поскольку инъекции анти-VEGF повторяются через регулярные промежутки времени (обычно ежемесячно) для AMD, риск является кумулятивным. Другие типы интравитреальных инъекций, такие как кортикостероиды при воспалительных заболеваниях глаз, также используются все чаще.Ретроспективное исследование, основанное на базе данных медицинских заявлений США, показало более высокую частоту эндофтальмита после кортикостероидов, чем после инъекций анти-VEGF (0,13% против 0,02%) (49), но это исследование было подвергнуто сомнению, поскольку оно не сравнивало только положительные посевы случаев (результаты посева отсутствовали). Стерильное воспаление, имитирующее эндофтальмит, может возникать с большей частотой после приема кортикостероидов, чем после инъекций анти-VEGF.

Пациенты с постинъекционным эндофтальмитом обычно появляются в течение 5 дней после инъекции, и наиболее частым симптомом является снижение зрения.Британский обзор 47 пациентов с постинъекционным эндофтальмитом показал, что 96% имели снижение зрения, 73% имели боль в глазах / светобоязнь и 49% имели покраснение глаз (50). Микробиология постинъекционного эндофтальмита включает коагулазонегативные стафилококки (65%), стрептококки viridans (30%), S. aureus (от 0 до 5%) и другие (от 0 до 4%) (48, 50, 51). Это похоже на микробиологию посткатарактального эндофтальмита, за исключением того, что заболеваемость стрептококками viridans более чем в 3 раза выше, чем при посткатарактальном эндофтальмите, и это может быть связано с тем, что интравитреальные инъекции обычно выполняются в офисе, а не в операционной, и без использования масок.Флора ротовой полости, включая стрептококки viridans, может распыляться при разговоре, а использование масок или соблюдение строгой политики запрета на разговоры во время инъекций снижает частоту стрептококкового эндофтальмита. Исследование 25 центров во Франции, которые использовали маски для инъекций (некоторые из которых выполнялись в операционных), показало очень низкую (0,007%) частоту эндофтальмита, при этом стрептококки вызывают только 4% случаев (52). Центр в США снизил частоту постинъекционного эндофтальмита в 2 раза (с 0.От 02% до 0,01%) и эндофтальмита, вызванного оральными патогенами, в 7 раз (от 0,015% до 0,002%) за счет введения политики молчания во время инъекций в офисе (53).

Редко постинъекционный эндофтальмит может быть частью вспышки из-за использования зараженных растворов. Симптомы, как правило, появляются быстро в бактериальных случаях, но могут быть отложены в случае грибковых заболеваний. Все 12 пациентов, у которых развился стрептококковый эндофтальмит после инъекции загрязненных растворов анти-VEGF, проявили себя через 1-6 дней после инъекции, в то время как у 14 пациентов, у которых развился эндофтальмит Bipolaris hawaiiensis после инъекции зараженного триамцинолона, симптомы развились в среднем через 83 дня (54, 55) .Результаты вспышек, как правило, плохие: вспышка эндофтальмита Escherichia coli и Citrobacter , связанная с поддельным раствором анти-VEGF, оставила 14% слепых глаз (отсутствие световосприятия) (56).

Лечение постинъекционного эндофтальмита такое же, как и послеоперационного эндофтальмита, описанного выше, и визуальные результаты частично зависят от патогена: стрептококки особенно опасны для глаз. Обзор 197 случаев, описанных в 43 публикациях, показал, что очень плохие результаты (зрение ≤20/400) наблюдались в 13% случаев коагулазонегативного стафилококка и в 31% случаев с отрицательным посевом, но в 94% случаев стрептококка (48). .

ПОСТТРАВМАТИЧЕСКИЙ ЭНДОФТАЛЬМИТ

Проникающая травма глаза (открытая травма глазного яблока) встречается у 2–3,8 / 100 000 населения в США. Посттравматический эндофтальмит встречается у 0,9–18% взрослых и от 5 до 54% детей с такими повреждениями (57, 58). Факторы риска включают несвоевременное лечение травмы глаза, сельские условия травмы, наличие внутриглазного инородного тела, разрушение капсулы хрусталика и рваную травму, а не тупую травму с разрывом глазного яблока. Симптомы эндофтальмита включают снижение зрения и боль в глазах.При осмотре обычно выявляют гипопион и внутриглазное воспаление, иногда можно увидеть рану глаза с гнойным дренажом. Конкретные данные могут указывать на возбудителя. Инфекции Bacillus являются молниеносными и иногда связаны с кольцевым абсцессом роговицы, тогда как при эндофтальмите Clostridium могут наблюдаться пузырьки газа в передней камере и зеленовато-коричневый гипопион (59). Основные причины посттравматического эндофтальмита включают коагулазонегативные стафилококки, виды Bacillus , стрептококки, грамотрицательные палочки (например,g., Pseudomonas и Klebsiella ) и грибов. Лечение включает удаление любого оставшегося внутриглазного инородного объекта, интравитреальные антибиотики, в большинстве случаев витрэктомию и часто дополнительные местные и системные антибиотики. Вакцина против столбняка показана после открытых травм глазного яблока, если последняя вакцинация пациента проводилась ≥5 лет назад. Конечная острота зрения варьируется и в значительной степени зависит от патогена, но одно многоцентровое исследование показало, что в 41% случаев было достигнуто 20/40 или выше, в то время как 47% остались с минимальным (только восприятие света) или отсутствием зрения (60 ).

ЭНДОФТАЛЬМИТ, СВЯЗАННЫЙ С БЛЕБОМ

Эндофтальмит, связанный с пузырьками, обычно возникает внезапно, но через несколько месяцев или лет после операции по поводу глаукомы, при которой образуется пузырь. Фильтрующий пузырь – это дефект склеры, покрытый конъюнктивой, который улучшает всасывание воды в большой круг кровообращения. Однако после этой операции только тонкий барьер конъюнктивы отделяет водянистую влагу от внешнего мира в месте расположения пузыря, и это несет постоянный риск развития эндофтальмита.Большое исследование из Японии показало, что риск эндофтальмита составляет 1% в течение 5 лет (61), а в других исследованиях сообщается о более высоких показателях. Вытекающие (водянистые) капли увеличивают риск эндофтальмита почти в 5 раз (61). Инфекция пузырька, или блебит, часто предшествует эндофтальмиту. Блебит следует немедленно лечить, чтобы предотвратить прогрессирование. Стрептококки, в первую очередь стрептококки viridans, но также S. pneumoniae , являются патогенами более чем в одной трети случаев эндофтальмита, связанного с пузырями; другие основные патогены включают S.aureus , Haemophilus influenzae и энтерококки. Лечение эндофтальмита заключается в внутрикамерных и / или интравитреальных инъекциях антибиотиков, в тяжелых случаях – витрэктомии, а в большинстве случаев – местными антибиотиками; системные антибиотики, такие как хинолоны, также иногда назначают в качестве дополнительной терапии. Визуальный результат плохой для случаев из-за патогенных микроорганизмов, которые являются вирулентными в глазах, таких как энтерококки и стрептококки любого типа.

ЭНДОФТАЛЬМИТ, СВЯЗАННЫЙ С КЕРАТИТОМ

Кератит – это инфекция роговицы, и в большинстве случаев для лечения используются местные антибиотики.Развитие эндофтальмита встречается редко и обычно происходит в результате распространения инфекции через роговицу в водную среду. Большинство случаев эндофтальмита, связанного с кератитом, вызваны плесенью. Серия из почти 10 000 случаев кератита из Флориды показала, что только 0,5% прогрессировали до эндофтальмита; грибковый кератит (кератомикоз) был значительным фактором риска такого прогрессирования (62). Более половины случаев эндофтальмита в этой серии были вызваны плесенью (53%), в то время как грамположительные бактерии (27%) и грамотрицательные бациллы (20%) составили остальные случаи.В серии исследований из Нью-Джерси сообщалось о более низком уровне грибкового эндофтальмита (17%), но это отражает гораздо более низкую заболеваемость кератомикозом в более холодном и менее влажном климате (63). Риск прогрессирования кератомикоза в эндофтальмит варьируется, но один центр сообщил, что у 6% из случаев кератита Fusarium , выявленных во время вспышки, развился эндофтальмит (64).

В случаях эндофтальмита, связанного с кератомикозом, наиболее частыми причинами являются Fusarium и Aspergillus (65).Кератомикоз может быть трудно диагностировать, поскольку посев соскобов роговицы может быть ложноотрицательным. Появление инфильтрата роговицы часто указывает на диагноз. В отличие от бактерий плесневые грибки часто образуют инфильтраты роговицы с нечеткими или перистыми краями и сателлитные поражения (). Неинвазивные методы, такие как оптическая когерентная томография, могут помочь в диагностике кератомикоза. Обнаружение вайевидных выступов, выходящих из задней части роговицы в водную среду, или толстого комкованного материала в водной среде, вызывает беспокойство при эндофтальмите, связанном с кератомикозом.Лечение эндофтальмита, связанного с кератитом, включает внутрикамерные и / или интравитреальные антибиотики, местные антибиотики, дополнительные системные противогрибковые антибиотики в случаях, связанных с кератомикозом, и витрэктомию по мере необходимости. Для уменьшения объема инфекции может потребоваться пересадка роговицы, особенно в случаях, вызванных плесенью.

Эндофтальмит, возникший в результате распространения кератита Alternaria . Обратите внимание на неровные границы инфильтрата роговицы и поражения сателлитов, которые типичны для плесневого кератита.

ЭНДОГЕННЫЙ ЭНДОФТАЛЬМИТ

Эндогенный эндофтальмит, который возникает в результате бактериемического или грибкового посева глаза, встречается редко. Только от 5 до 15% всех случаев эндофтальмита являются эндогенными (66). Обычно в первую очередь засевают сосудистую оболочку глаза, так как она очень сосудистая, и, как следствие, внутриглазная инфекция обычно начинается в заднем сегменте. Бактериальные случаи обычно проявляются остро, а грибковые – подостры. Только половина пациентов с эндогенным эндофтальмитом в одной серии имели симптомы основной инфекции при поступлении, и только 75% имели положительные посевы крови (67).Инфекции, обычно связанные с эндогенным эндофтальмитом, включают абсцесс печени, эндокардит и инфекцию мочевыводящих путей (67, 68). Посев крови часто бывает положительным в этих случаях, но может быть отрицательным в случаях из-за преходящей бактериемии или фунгемии, например, связанных с в / в. употребление наркотиков (IVDU), постоянный центральный венозный катетер или амбулаторные желудочно-кишечные процедуры, такие как эндоскопия или колоноскопия. В таких случаях у офтальмолога должен быть высокий индекс подозрения, поскольку неправильный диагноз (обычно как увеит) приводит к задержке терапии.Риск развития эндофтальмита из-за бактериемии или фунгемии у госпитализированного пациента, по-видимому, в целом низкий, при этом в одном исследовании в США общая частота составляет 0,05%, хотя после фунгемии этот показатель выше (0,4%), чем после бактериемии (0,04%) (69). Более высокая частота эндофтальмита может также наблюдаться у пациентов с бактериемией K. pneumoniae , связанной с абсцессом печени, как это наблюдается в центрах Восточной Азии.

Эндогенный бактериальный эндофтальмит

Пациенты с эндогенным бактериальным эндофтальмитом (ВБЭ) обычно проявляются остро, 90% жалуются на снижение зрения, у 50% – боль в глазах (50%), у 35% – гипопион и у 33% – витрит (70 ).Системные симптомы могут отсутствовать, и от половины до двух третей пациентов сначала обращаются к офтальмологу (26, 67). Лихорадка (37% случаев) и симптомы гриппа (20%) были наиболее частыми системными жалобами в одной серии (70). От четверти до одной трети случаев может иметь поздний диагноз; была оценена 3-дневная задержка постановки диагноза (70). Возбудитель диагностируется с помощью положительной крови или внутриглазных культур, а распространенными возбудителями являются S. aureus , стрептококки (включая viridans streptococci, S.pneumoniae и стрептококки групп A и B), а также грамотрицательные палочки, такие как Escherichia coli и K. pneumoniae . В странах Восточной Азии многие случаи EBE вызваны K. pneumoniae серотипов K1 и K2 и связаны с абсцессами печени.

Лечение включает системную терапию основной инфекции и интравитреальные антибиотики при эндофтальмите. Также часто показана витрэктомия из-за вирулентности патогенов и тяжелого эндофтальмита, который они вызывают.Прогноз в большинстве случаев плохой. В серии из 75 пациентов с EBE (89 глаз), пролеченных в период с 2001 по 2012 год, только 41% глаз восстановили зрение 20/200 или лучше, в то время как 19% глаз были энуклеированы или потрошены (70). Витрэктомия была связана с лучшим визуальным прогнозом и более низкой частотой эвисцерации или энуклеации.

Эндогенный грибковый эндофтальмит

Кандида является наиболее частой причиной эндогенного грибкового эндофтальмита (ЭФЭ). Начальным проявлением обычно является хориоретинит, проявляющийся в виде пушистых белых хориоретинальных образований.Клинически это может протекать бесследно, при этом симптомы развиваются только после развития значительного витрита. Следует отметить, что хориоретинит Candida считается типом эндофтальмита в некоторых исследованиях, в то время как другие отделяют хориоретинит от эндофтальмита, что означает случаи со значительным витритом; здесь будет следовать последнему соглашению.

У пациентов с кандидемией заболеваемость хориоретинитом намного выше, чем эндофтальмитом; проспективное исследование 370 пациентов с кандидемией показало, что у 11% был хориоретинит, в то время как только у 1.6% имели эндофтальмит (71). Поскольку глазной кандидоз может протекать бессимптомно до поздней стадии инфекции и поскольку многие пациенты с кандидемией слишком больны, чтобы проявлять визуальные симптомы, всем пациентам с кандидемией следует пройти обследование глазного дна. Факторы риска для хориоретинита и эндофтальмита Candida отражают факторы риска кандидемии: центральные венозные катетеры, полное парентеральное питание, антибиотики широкого спектра действия, недавняя абдоминальная хирургия, нейтропения и терапия глюкокортикоидами у стационарных пациентов и IVDU и недавние центральные венозные катетеры, включая центральные периферические катетеры. катетеры (линии PICC), в амбулаторных условиях.При осмотре глаза обычно выявляются пушистые белые хориоретинальные поражения, а также может быть витрит или распространение на стекловидное тело (). Пуховые шарики, подвешенные в стекловидном теле, могут выглядеть как «жемчужная нить». Диагноз ставится на основании посевов крови или стекловидного тела. В большинстве случаев документально подтвержденной кандидемии диагноз EFE основывается на результатах исследования глаз, а не на посеве стекловидного тела. У амбулаторных пациентов посев крови может быть отрицательным, поскольку кандидемия была преходящей и произошла несколькими днями или неделями раньше; В этих случаях требуется посев внутриглазных жидкостей, включая витрэктомию, если исходные посевы аспирата отрицательны. Candida albicans – преобладающий вид EFE, но описаны все виды Candida .

Эндогенный Candida albicans эндофтальмит, вызванный употреблением запрещенных инъекционных наркотиков. Посев на аспират стекловидного тела был отрицательным, поэтому была выполнена витрэктомия, которая позволила поставить диагноз. Обратите внимание на белые поражения на сетчатке, типичные для эндогенного грибкового эндофтальмита.

Лечение кандидемии обсуждалось в недавних рекомендациях Американского общества инфекционистов, в которых также обсуждается лечение хориоретинита и эндофтальмита Candida (72).Лечение системными агентами обычно бывает адекватным в случаях хориоретинита, не имеющего угрожающих макуле поражений. Хориоретинит, угрожающий макуле, и случаи эндофтальмита требуют интравитреальных инъекций противогрибковых препаратов (амфотерицин или вориконазол) в дополнение к системной терапии. В случаях эндофтальмита со значительным витритом также обычно требуется витрэктомия. Для системных агентов флуконазол рекомендуется для чувствительных к флуконазолу Candida , вориконазол для устойчивых к флуконазолу, но чувствительных к вориконазолу изолятов и липосомальный амфотерицин с 5-флуцитозином или без него для азол-резистентных штаммов.Флуконазол или вориконазол предпочтительнее амфотерицина для чувствительных изолятов, поскольку азолы менее токсичны и производят более высокие уровни в стекловидном теле. Вориконазол, например, достигает уровней стекловидного тела, которые составляют примерно 40% от сывороточных уровней даже в глазах без воспаления. Системные эхинокандины не достигают адекватных концентраций в стекловидном теле для лечения эндофтальмита. Эхинокандины могут достигать разумных уровней в сосудистой оболочке, но их роль в лечении только хориоретинита неизвестна, поскольку данных о людях мало.В одном исследовании измеряли уровни микафунгина у пациента, получавшего в / в. микафунгина до запланированной энуклеации и обнаружил разумные уровни в сосудистой оболочке (34% от уровней в плазме), но очень низкие уровни в сетчатке или стекловидном теле (7% и 0,9% от уровней в плазме соответственно) (73).

Эндогенный плесневый эндофтальмит встречается редко и встречается в основном у пациентов с ослабленным иммунитетом, таких как пациенты с гематологическими злокачественными новообразованиями или реципиенты трансплантата, или пациенты с IVDU. Aspergillus и Fusarium являются основными патогенами, хотя также встречаются Scedosporium и другие грибы.Терапия включает системную противогрибковую терапию плюс интравитреальный амфотерицин или вориконазол и обычно витрэктомию.

ВИЗУАЛЬНЫЕ РЕЗУЛЬТАТЫ И МИКРОБИОЛОГИЯ

Некоторая потеря зрения является обычным явлением после эндофтальмита, но окончательную остроту зрения обычно невозможно определить через несколько недель или месяцев. Если глаз не воспринимает свет, зрение может улучшиться после разрешения острого воспаления. Любое зрение стоит сохранить, поэтому нужно приложить все усилия, чтобы сохранить даже зрение световосприятия.

Визуальные исходы при эндофтальмите связаны с рядом факторов, включая остроту зрения и своевременность соответствующей терапии, но вовлеченный патоген является основным фактором почти во всех случаях. При посткатарактальном эндофтальмите EVS обнаружил, что «хорошая» конечная острота зрения 20/100 или выше наблюдалась примерно в 80% случаев стафилококка с отрицательной культурой или коагулазой, но только в 50% случаев, вызванных S. aureus , 30 % из-за стрептококков (любого типа) и 56% из-за грамотрицательных бацилл (86).Рассматривая исходы по патогенам независимо от категории эндофтальмита, группа из Флориды сообщила, что очень низкая острота зрения (20/400 или хуже) возникала в 75% случаев из-за стрептококков (без разницы в исходах между стрептококками viridans, S. pneumoniae ). и бета-гемолитические стрептококки), 93% случаев энтерококков, 64% случаев Bacillus , 69% случаев H. influenzae , 70% случаев Serratia и 92% случаев Pseudomonas (74 , –79).Эти случаи наблюдались в течение 10-летнего периода в офтальмологической больнице высшего уровня, куда, вероятно, будут направлены пациенты с наиболее тяжелыми формами эндофтальмита. Однако есть надежда даже в случаях эндофтальмита из-за бактерий, связанных с плохим визуальным прогнозом. Bacillus вызывает молниеносный эндофтальмит, но в 18% случаев в этой глазной больнице окончательная острота зрения была 20/60 или выше (76).

ПРОФИЛАКТИКА

Публикуемых рандомизированных контролируемых исследований, оценивающих эффективность различных предлагаемых мер по профилактике эндофтальмита, практически нет, поэтому оптимальные методы в значительной степени неизвестны (80).Профилактика глазных операций с применением местного повидон-йода до операции и местных антибиотиков в послеоперационном периоде обычно проводится, но эти меры не оценивались в рандомизированном контролируемом исследовании. Внутрикамерные антибиотики все чаще используются для профилактики операции по удалению катаракты. Рандомизированное контролируемое исследование в Европе показало, что внутрикамерная профилактика цефуроксимом в конце операции по поводу катаракты была связана с частотой послеоперационного эндофтальмита 0,06% по сравнению с 0.3% в контрольных глазах (81). Однако результаты исследования были подвергнуты сомнению в Соединенных Штатах, поскольку частота эндофтальмита в контрольной группе была примерно в 3 раза выше, чем в большинстве центров США. Сообщалось о редких случаях анафилаксии при профилактическом внутрикамерном введении цефуроксима (82), а профилактическое внутрикамерное введение ванкомицина было связано с редким, но разрушительным осложнением геморрагического окклюзионного васкулита сетчатки (83, 84). Для снижения риска постинъекционного эндофтальмита во многих центрах принято использовать маски или строго соблюдать политику молчания во время инъекций.Для пациентов с проникающей травмой глаза быстрое хирургическое вмешательство и 48-часовой профилактический курс системных антибиотиков (например, ванкомицин плюс цефтазидим) были связаны с очень низкой частотой посттравматического эндофтальмита (57). Пациенты, у которых есть фильтрующие пузырьки от глаукомы, должны без промедления лечиться от блебитов, чтобы не допустить, чтобы эта относительно незначительная инфекция привела к эндофтальмиту, связанному с пузырьками. Я также рекомендую пациентам с фильтрующими пузырьками сделать пневмококковую вакцинацию (80, 85).Эндогенный бактериальный эндофтальмит обычно нельзя предвидеть или предотвратить, но некоторые случаи эндогенного эндофтальмита Candida можно предотвратить путем скрининга всех пациентов с кандидемией с помощью обследования глазного дна.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Эндофтальмит – это тяжелая глазная инфекция, которая требует быстрой диагностики и лечения для сохранения зрения. Эндофтальмит может быть вызван патогенами, попавшими в глаз из внешнего источника (экзогенный эндофтальмит) или через кровоток (эндогенный эндофтальмит).Большинство случаев экзогенного эндофтальмита возникает как осложнение операции по удалению катаракты, интравитреальной инъекции или проникающей травмы глаза. Эндогенный эндофтальмит может развиться в результате метастатического распространения экстраокулярного очага инфекции, такого как эндокардит или абсцесс печени, или в результате транзиторной бактериемии или фунгемии, связанных с незаконным инъекционным употреблением наркотиков или постоянным центральным венозным катетером. Почти все пациенты обращаются со сниженным зрением, а у некоторых также наблюдается боль в глазах. Гипопион и внутриглазное воспаление – типичные признаки при обследовании глаз.Диагноз ставится клинически и подтверждается культурами стекловидного тела и / или водной жидкости, а в эндогенных случаях – культурами крови. Новые диагностические методы, такие как ПЦР, обещают быстрое выявление внутриглазных патогенов, в том числе в случаях с отрицательным посевом. Важно незамедлительное лечение интравитреальными антибиотиками; в некоторых случаях также может помочь хирургическая витрэктомия. Визуальный результат частично зависит от возбудителя. В случае коагулазонегативных стафилококков обычно восстанавливается хорошее зрение, в то время как половина или более глаз инфицированы стрептококками (любого типа), S.aureus , или грамотрицательные палочки остаются с плохим зрением. Было проведено несколько рандомизированных контролируемых исследований для определения наиболее эффективных способов предотвращения эндофтальмита, и необходимо больше таких исследований.

Биография

•

Марлен Л. Дюранд , доктор медицины, закончила Стэнфордский университет и Гарвардскую медицинскую школу, закончила резидентуру и стипендию по инфекционным заболеваниям в Массачусетской больнице общего профиля (MGH), а затем присоединилась к персоналу MGH.Она остается сотрудником отдела инфекционных заболеваний MGH, а также является директором службы инфекционных заболеваний Массачусетской глазной и ушной больницы. Она является адъюнкт-профессором медицины и адъюнкт-профессором офтальмологии в Гарвардской медицинской школе. Ее клиническая работа по лечению пациентов с инфекциями глаз или ушей, носа и горла (ЛОР) привела к ее исследовательскому интересу к определению оптимальных способов диагностики и лечения этих инфекций. Ей нравилось сотрудничать со своими коллегами в области инфекционных заболеваний, микробиологии, офтальмологии и отоларингологии по темам клинических исследований.

ССЫЛКИ

1. Melo GB, Bispo PJM, Yu MCZ, Pignatari AC, Höfling-Lima AL. 2011 г. Микробный профиль и чувствительность к антибиотикам бактериального эндофтальмита с положительной культурой. Глаз 25: 382–388. DOI: 10.1038 / eye.2010.236. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 2. Гупта А., Орланс Х.О., Хорнби С.Дж., Боулер МС. 2014 г. Микробиология и визуальные результаты бактериального эндофтальмита с положительным посевом в Оксфорде, Великобритания. Graefes Arch Clin Exp Офтальмол 252: 1825–1830. DOI: 10.1007 / s00417-014-2658-7.[PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 3. Кесснер Р., Голан С., Барак А. 2014 г. Изменения этиологии эндофтальмита с 2003 по 2010 год в крупном медицинском центре третичного уровня. Eur J Ophthalmol 24: 918–924. DOI: 10.5301 / ejo.5000473. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 4. Фалаварджани К.Г., Некозаде С., Модаррес М., Парвареш М.М., Хашеми М., Суди Р., Алемзаде С.А. 2012 г. Изоляты и устойчивость к антибиотикам подтвержденных посевом пациентов случаев эндофтальмита представлены в справочный центр в Тегеране. Ближний Восток Afr J Ophthalmol 19: 361–363.DOI: 10.4103 / 0974-9233.102740. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 5. Молони Т.П., Пак Дж. 2014 г. Микробиологические изоляты и чувствительность к антибиотикам при культуральном эндофтальмите: 15-летний обзор. Br J Ophthalmol 98: 1492–1497. DOI: 10.1136 / bjophthalmol-2014-305030. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 6. Nam KY, Lee JE, Lee JE, Jeung WJ, Park JM, Park JM, Chung IY, Han YS, Yun IH, Kim HW, Byon IS. 2015 г. Клинические особенности инфекционного эндофтальмита в Южной Корее: пятилетнее многоцентровое исследование.BMC Infect Dis 15: 177–183. DOI: 10.1186 / s12879-015-0900-5. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 7. Шарма С., Падхи Т.Р., Басу С., Кар С., Рой А., Дас Т. 2014 г. Пациенты с эндофтальмитом, наблюдаемые в офтальмологическом центре в Одише: клинико-микробиологический анализ. Индийский J Med Res 139: 91–98. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 8. Гарама А.А., Мохаррам А.М., Исмаил М.А., Аль-Хусайни А.К. 2012 г. Бактериальный и грибковый эндофтальмит в Верхнем Египте: родственные виды и факторы риска.Азиатский Пак Джей Троп Биомед 2: 655–659. DOI: 10.1016 / S2221-1691 (12) 60115-4. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 9. Дуань Ф, Ву К., Ляо Дж, Чжэн Ю, Юань З, Тан Дж, Линь X. 2016 г. Возбудители инфекционного эндофтальмита: 5-летнее ретроспективное исследование. J Ophthalmol DOI: 10.1155 / 2016/6764192. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 10. Симунович М.П., Раш Р.Б., Хунёр А.П., Чанг А.А. 2012 г. Эндофтальмит после интравитреальной инъекции по сравнению с эндофтальмитом после операции по удалению катаракты: клинические особенности, возбудители и результаты лечения.Br J Ophthalmol 96: 862–866. DOI: 10.1136 / bjophthalmol-2011-301439. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 11. Вальдес-Гарсия Дж. Э., Климент А, Чавес-Мондрагон Э, Лозано-Рамирес Дж. Ф. 2014 г. Бактериальное заражение передней камеры в хирургии катаракты. BMC Офтальмол 14:57. DOI: 10.1186 / 1471-2415-14-57. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 12. Сринивасан Р., Тирумал С., Канунго Р., Натараджан М.К. 2002 г. Микробное заражение передней камеры при факоэмульсификации. J Катаракта Рефракт Хирургия 28: 2173–2176.DOI: 10.1016 / S0886-3350 (02) 01493-1. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 13. Лундстрем М., Вейде Дж., Стеневи Ю., Торбум В., Монтан П. 2007 г. Эндофтальмит после операции по удалению катаракты: общенациональное проспективное исследование, оценивающее заболеваемость в зависимости от типа и местоположения разреза. Офтальмология 114: 866–870. DOI: 10.1016 / j.ophtha.2006.11.025. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 14. Fang CT, Lai SY, Yi WC, Hsueh PR, Liu KL, Chang SC. 2007 г. Klebsiella pneumoniae, генотип K1: новый патоген, вызывающий септические осложнения глаз или центральной нервной системы в результате гнойного абсцесса печени.Клин Инфекция Болезнь 45: 284–293. DOI: 10,1086 / 519262. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 15. Вискур Би Джей, Хант Джей Джей, Каллеган МС. 2008 г. Гипермуковязкость как фактор вирулентности при экспериментальном эндофтальмите Klebsiella pneumoniae . Инвестируйте офтальмол Vis Sci 49: 4931–4938. DOI: 10.1167 / iovs.08-2276. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 16. Линь Т.Л., Се П.Ф., Хуанг Ю.Т., Ли В.К., Цай Ю.Т., Су ПА, Пан Ю.Дж., Сюй Ч.Р., Ву М.С., Ван Дж.Т. 2014 г. Выделение бактериофага и его деполимеразы, специфичных для капсулы K1 Klebsiella pneumoniae: значение для типирования и лечения.J заразить Дис 210: 1734–1744. DOI: 10.1093 / infdis / jiu332. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 17. Parkunan SM, Callegan MC. 2016 г. Патогенез бактериального эндофтальмита, с. 17–47. В Durand ML, Miller JW, Young LH (ed), Endophthalmitis. Издательство Springer International, Базель, Швейцария. [Google Scholar] 18. Каллеган М.С., Кейн С.Т., Кокран, округ Колумбия, Рамадан РТ, Чодош Дж., Маклин С., Строман Д.В. 2006 г. Профили факторов вирулентности и чувствительность к противомикробным препаратам изолятов глазной палочки Bacillus .Cur Eye Res 31: 693–702. DOI: 10.1080 / 02713680600850963. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 19. Каллеган М.С., Кейн С.Т., Кокран, округ Колумбия, Гилмор М.С., Гоминет М., Лереклюс Д. 2003 г. Связь факторов, регулируемых plcR, с вирулентностью эндофтальмита Bacillus . Заразить иммунную 71: 3116–3124. DOI: 10.1128 / IAI.71.6.3116-3124.2003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 20. Каллеган М.С., Кейн С.Т., Кокран, округ Колумбия, Новосад Б., Гилмор М.С., Гоминет М., Лереклюс Д. 2005 г. Bacillus endophthalmitis: роль бактериальных токсинов и подвижность во время инфекции.Инвестируйте офтальмол Vis Sci 46: 3233–3238. DOI: 10.1167 / iovs.05-0410. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 21. Parkunan SM, Randall CB, Astley RA, Furtado GC, Lira SA, Callegan MC. 10 июнь 2016 г. CXCL1, но не IL-6, значительно влияет на внутриглазное воспаление во время инфекции. J Leukoc Biol. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 22. Ng EW, Costa JR, Samiy N, Ruoff KL, Connolly E, Cousins FV, D’Amico DJ. 2002 г. Вклад пневмолизина и аутолизина в патогенез экспериментального пневмококкового эндофтальмита.Сетчатка 22: 622–632. DOI: 10.1097 / 00006982-200210000-00014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 23. Сандерс ME, Norcross EW, Робертсон ZM, Мур QC 3rd, Fratkin J, Marquart ME. 2011 г. Капсула Streptococcus pneumoniae необходима для полной вирулентности пневмококкового эндофтальмита. Инвестируйте офтальмол Vis Sci 52: 865–872. DOI: 10.1167 / iovs.10-5513. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 24. Байлиф С., Экочард Р., Казоли Э., Френей Дж., Бурильон К., Коджикян Л. 2008 г. Адгезия и кинетика образования биопленок Staphylococcus epidermidis к различным типам интраокулярных линз в условиях динамического потока.J Катаракта Рефракт Хирургия 34: 153–158. DOI: 10.1016 / j.jcrs.2007.07.058. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 25. Мазотерас П., Квилес М.Г., Мартинс Биспо П.Дж., Хёфлинг-Лима А.Л., Пигнатари А.С., Казароли-Марано Р.П. 2016 г. Анализ биопленок и жидкостей интраокулярной линзы после длительной неосложненной хирургии катаракты. Am J Ophthalmol 169: 46–57. DOI: 10.1016 / j.ajo.2016.06.012. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 26. Джексон Т.Л., Эйкин С.Дж., Грэм Э.М., Стэнфордский университет. 2003 г. Эндогенный бактериальный эндофтальмит: 17-летняя проспективная серия и обзор 267 зарегистрированных случаев.Обзор офтальмол 48: 403–423. DOI: 10.1016 / S0039-6257 (03) 00054-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 27. Лалвани Г.А., Флинн Х.В. мл., Скотт И.Ю., Куинн С.М., Беррокал А.М., Дэвис Д.Л., Мюррей Т.Г., Смидди В.Е., Миллер Д. 2008 г. Острый эндофтальмит после операции по удалению катаракты роговицы (1996-2005 гг.). Клинические особенности, возбудители и результаты остроты зрения. Офтальмология 115: 473–476. [PubMed] [Google Scholar] 28. Табан М., Беренс А., Ньюкомб Р.Л., Нобе М.Ю., Саеди Дж., Sweet PM, Макдоннелл П.Дж. 2005 г. Острый эндофтальмит после операции по удалению катаракты: систематический обзор литературы.Арка Офтальмол 123: 613–620. DOI: 10.1001 / archopht.123.5.613. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 29. Chiquet C, Boisset S, Cornut P-L, Maurin M. 2016 г. Молекулярная диагностика эндофтальмита, с. 77–97. В Durand ML, Miller JW, Young LH (ed), Endophthalmitis. Издательство Springer International, Базель, Швейцария. [Google Scholar] 30. Хайкин П.Г., Тобал К., Макинтай Г., Мэтисон М.М., Таулер Н.М., Лайтман С.Л. 1994 г. Диагностика отсроченного послеоперационного эндофтальмита с помощью полимеразной цепной реакции бактериальной ДНК в образцах стекловидного тела.J Med Microbiol 40: 408–415. DOI: 10.1099 / 00222615-40-6-408. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 31. Chiquet C, Cornut PL, Benito Y, Thuret G, Maurin M, Lafontaine PO, Pechinot A, Palombi K, Lina G, Bron A, Denis P, Carricajo A, Creuzot C, Romanet JP, Vandenesch F, Французская институциональная группа по изучению эндофтальмита . 2008 г. ПЦР на эубактерии для выявления и идентификации бактерий в 100 случаях острого посткатарактального хирургического эндофтальмита. Инвестируйте офтальмол Vis Sci 49: 1971–1978. DOI: 10.1167 / iovs.07-1377. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 32.Хонг Б.К., Ли С.С., Ван Гелдер Р.Н., Гарг С.Дж. 2015 г. Новые методы обнаружения патогенов при эндофтальмите. Курр Опин Офтальмол 26: 221–225. DOI: 10.1097 / ICU.0000000000000145. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 33. Ли А.Ю., Акилесваран Л., Тиббетс, доктор медицины, Гарг С.Дж., Ван Гелдер Р.Н. 2015 г. Идентификация вируса крутящего момента тено при эндофтальмите с отрицательной культурой путем репрезентативного глубокого секвенирования ДНК. Офтальмология 122: 524–530. DOI: 10.1016 / j.ophtha.2014.09.001. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 34.Васильев Е.В., Трофимов Д.Ю., Тоневицкий А.Г., Ильинский В.В., Коростин Д.О., Ребриков Д.В. 2009 г. Распространение Torque teno virus (TTV) среди здорового населения России. Вирусология J 6: 134. DOI: 10.1186 / 1743-422X-6-134. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 35. Группа изучения эндофтальмита витрэктомии. 1995 г. Результаты исследования витрэктомии эндофтальмита: рандомизированное испытание немедленной витрэктомии и внутривенного введения антибиотиков для лечения послеоперационного бактериального эндофтальмита. Арка Офтальмол 113: 1479–1496.DOI: 10.1001 / archopht.1995.01100120009001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 36. Баннерман Т.Л., Роден Д.Л., Макаллистер С.К., Миллер Дж. М., Уилсон, Лос-Анджелес. 1997 г. Источник коагулазонегативных стафилококков в исследовании эндофтальмита витрэктомии. Сравнение вековых и внутриглазных изолятов с использованием гель-электрофореза в импульсном поле. Арка Офтальмол 115: 357–361. [PubMed] [Google Scholar] 37. Леонг Дж. К., Шах Р., Маккласки П. Дж., Бенн Р. А., Тейлор РФ. 2002 г. Бактериальное заражение передней камеры при операции по факоэмульсификации катаракты.J Катаракта Рефракт Хирургия 28: 826–833. DOI: 10.1016 / S0886-3350 (01) 01160-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 38. Бухта В., Фейерманова А., Ваза М., Башкова Л., Кутова Р., Кубатова А., Вейсова М. 2014 г. Вспышка грибкового эндофтальмита, вызванного Fusarium oxysporum, после операции по удалению катаракты. Микопатология 177: 115–121. DOI: 10.1007 / s11046-013-9721-5. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 39. Ананд А.Р., Тереза К.Л., Мадхаван Х.Н. 2000 г. Спектр этиологических агентов послеоперационного эндофтальмита и чувствительность бактериальных изолятов к антибиотикам.Индийский J Ophthalmol 48: 123–128. [PubMed] [Google Scholar] 40. Шарма С., Саху С.К., Диллон В., Дас С., Рат С. 2015 г. Переоценка внутрикамерного цефуроксима в качестве профилактики эндофтальмита после операции по удалению катаракты в Индии. J Катаракта Рефракт Хирургия 41: 393–399. DOI: 10.1016 / j.jcrs.2014.05.038. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 41. Дофт Б.Х., Келси С.Ф., Вишневски С.Р. 1998 г. Дополнительные процедуры после первичной витрэктомии или пункционной биопсии в исследовании эндофтальмита витрэктомии. Офтальмология 105: 707.DOI: 10.1016 / S0161-6420 (98) 94028-3. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 42. Широдкар А.Р., Патенгей А., Флинн Х.В., Альбини Т.А., Беррокал А.М., Дэвис Дж.Л., Лалвани Г.А., Мюррей Т.Г., Смидди В.Е., Миллер Д. 2012 г. Отсроченный эндофтальмит по сравнению с острым началом после операции по удалению катаракты. Am J Ophthalmol 153: 391–398. DOI: 10.1016 / j.ajo.2011.08.029. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 43. Дэйв В.П., Шварц С.Г., Флинн Х.В. мл. 2014 г. Эндофтальмит после витрэктомии pars plana: обзор литературы о заболеваемости, возбудителях и результатах лечения.Клин офтальмол 8: 2183–2188. DOI: 10.2147 / OPTH.S71293. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 44. Табан М., Беренс А., Ньюкомб Р.Л., Нобе М.Ю., Макдоннелл П.Дж. 2005 г. Заболеваемость острым эндофтальмитом после проникающей кератопластики: систематический обзор. Арка Офтальмол 123: 605–609. DOI: 10.1001 / archopht.123.5.605. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 45. Chen JY, Jones MN, Srinivasan S, Neal TJ, Armitage WJ, Kaye SB, Консультативная группа NHSBT по глазным тканям и соавторы офтальмологов.2015 г. Аудиторское исследование OTAG 18. Эндофтальмит после проникающей кератопластики. Офтальмология 122: 25–30. [PubMed] [Google Scholar] 46. Вильгельм КР, Хасан СС. 2007 г. Прогностическая роль донорских культур корнеосклерального края при трансплантации роговицы. Офтальмология 114: 440–445. DOI: 10.1016 / j.ophtha.2006.09.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 47. Уильямс GA. 2014 г. Инъекции IVT: последствия для политики здравоохранения. Rev Ophthalmol 21: 62–64. [Google Scholar] 48. Филета JB, Скотт IU, Флинн HW. 2014 г. Мета-анализ инфекционного эндофтальмита после интравитреальной инъекции агентов противовоспалительного фактора роста эндотелия.Офтальмологические хирургические лазеры для визуализации сетчатки глаза 45: 143–149. DOI: 10.3928 / 23258160-20140306-08. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 49. Вандербик Б.Л., Бонаффини С.Г., Ма Л. 2015 г. Связь между интравитреальными стероидами и частотой постинъекционного эндофтальмита. Офтальмология 122: 2311–2315. DOI: 10.1016 / j.ophtha.2015.07.005. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 50. Lyall DAM, Tey A, Foot B, Roxburgh ST, Virdi M, Robertson C, MacEwen CJ. 2012 г. Постинравитреальный эндофтальмит против VEGF в Соединенном Королевстве: частота, особенности, факторы риска и исходы.Глаз (Лондон) 26: 1517–1526. DOI: 10.1038 / eye.2012.199. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 51. McCannel CA. 2011 г. Мета-анализ эндофтальмита после интравитреальной инъекции агентов противоваскулярного фактора роста эндотелия. Сетчатка 31: 654–661. DOI: 10.1097 / IAE.0b013e31820a67e4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 52. Dossarps D, Bron AM, Koehrer P, Aho-Glélé LS, Creuzot-Garcher C, FRCR net (сеть для специалистов FRenCh Retina). 2015 г. Эндофтальмит после интравитреальных инъекций: частота, картина, лечение и визуальный результат.Am J Ophthalmol 160: 17–25. DOI: 10.1016 / j.ajo.2015.04.013. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 53. Гарг С.Дж., Доллин М., Сюй Дж., Стори П., Вандер Дж.Ф. 2015 г. Влияние строгой политики «молчания» во время интравитреальной инъекции на постинъекционный эндофтальмит. Офтальмологические хирургические лазеры для визуализации сетчатки глаза 46: 1028–1034. DOI: 10.3928 / 23258160-20151027-07. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 54. Голдберг Р.А., Флинн Х.В. мл., Исом Р.Ф., Миллер Д., Гонсалес С. 2012 г. Вспышка эндофтальмита стрептококка после интравитреального введения бевацизумаба.Am J Ophthalmol 153: 204–208. DOI: 10.1016 / j.ajo.2011.11.035. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 55. Малый К.В., Чан С.К., Сильва-Гарсия Р., Уолш Т.Дж. 2014 г. Начало вспышки грибкового эндофтальмита Bipolaris hawaiiensis после интравитреальных инъекций триамцинолона. Офтальмология 121: 952–958. DOI: 10.1016 / j.ophtha.2013.10.040. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 56. Энтезари М., Карими С., Ахмади Х., Махмуди А.Х., Пархизгар Х., Ясери М. 2016 г. Крупная вспышка молниеносного бактериального эндофтальмита после интравитреального введения поддельного бевацизумаба.Graefes Arch Clin Exp Офтальмол 254: 1851–1856. DOI: 10.1007 / s00417-016-3426-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 57. Андреоли С.М., Андреоли М.Т., Клок CE, Ахуэро А.Е., Ваввас Д., Дюран М.Л. 2009 г. Низкая частота эндофтальмита в большом количестве открытых травм глазного яблока. Am J Ophthalmol 147: 601–608. DOI: 10.1016 / j.ajo.2008.10.023. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 59. Бхагат Н., Ли Х, Зарбин М.А. 2016 г. Посттравматический эндофтальмит, с. 151–170. В Durand ML, Miller JW, Young LH (ed), Endophthalmitis.Springer International, Базель, Швейцария. [Google Scholar] 60. Cornut PL, el Youssef B, Bron A, Thuret G, Gain P, Burillon C, Romanet JP, Vandenesch F, Maurin M, Creuzot-Garcher C, Chiquet C, Французская группа институциональных исследований эндофтальмита (FRIENDS). 2013. Многоцентровое проспективное исследование посттравматического эндофтальмита. Акта офтальмол 91: 475–482. DOI: 10.1111 / j.1755-3768.2011.02349.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 61. Ямамото Т., Савада А., Маяма С., Арайе М., Окубо С., Сугияма К., Куваяма Ю., Совместная группа по изучению заболеваемости и лечения инфекций, связанных с пузырями.2014 г. 5-летняя частота инфекций, связанных с пузырями, и их факторы риска после операций фильтрации с дополнительным митомицином C: совместное исследование заболеваемости и лечения инфекций, связанных с пузырями 2. Офтальмология 121: 1001–1006. DOI: 10.1016 / j.ophtha.2013.11.025. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 62. Генри С.Р., Флинн Х.В. мл., Миллер Д., Форстер Р.К., Альфонсо ЕС. 2012 г. инфекционный кератит, прогрессирующий до эндофтальмита: 15-летнее исследование микробиологии, связанных факторов и клинических результатов.Офтальмология 119: 2443–2449. DOI: 10.1016 / j.ophtha.2012.06.030. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 63. Малихи М., Ли Икс, Патель С., Эк Т, Чу Д.С., Зарбин М.А., Бхагат Н. 14 июль 2016 г. Эндофтальмит, связанный с инфекционным кератитом: 14-летнее исследование. Сетчатка. Epub впереди печати. [Google Scholar] 64. Розенберг К.Д., Флинн Х.В. мл., Альфонсо Е.К., Миллер Д. 2006 г. Июл-август Фузариозный эндофтальмит после кератита, связанного с контактными линзами. Лазеры для офтальмологической хирургии 37: 310–313. [PubMed] [Google Scholar] 65.Шен YC, Ван CY, Tsai HY, Lee HN. 2010 г. Внутрикамерная инъекция вориконазола при лечении грибкового эндофтальмита, возникшего в результате кератита. Am J Ophthalmol 149: 916–921. DOI: 10.1016 / j.ajo.2010.01.024. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 66. Дюран МЛ. 2016 г. Эндофтальмит: обзор, стр. 1–16. В Durand ML, Miller JW, Young LH (ed), Endophthalmitis. Издательство Springer International, Базель, Швейцария. [Google Scholar] 67. Окада А.А., Джонсон Р.П., Лайлс В.К., Д’Амико DJ, Бейкер А.С.1994 г. Эндогенный бактериальный эндофтальмит. Отчет о десятилетнем ретроспективном исследовании. Офтальмология 101: 832–838. [PubMed] [Google Scholar] 68. Чо Х, Шин Ю, Сигель Н.Х., Ю Х.Г., Собрин Л., Патель А., Дюран М.Л., Миллер Дж. В., Хусейн Д. 2016 г. Эндогенный эндофтальмит в американском и корейском населении: 8-летнее ретроспективное исследование. Ocul Immunol Inflamm. 26: 1–8. [PubMed] [Google Scholar] 69. Вазири К., Першинг С., Альбини Т.А., Мошфеги Д.М., Мошфеги А.А. 2015 г. Факторы риска, позволяющие прогнозировать эндогенный эндофтальмит у госпитализированных пациентов с гематогенными инфекциями в США.Am J Ophthalmol 159: 498–504. DOI: 10.1016 / j.ajo.2014.11.032. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 70. Джексон Т.Л., Параскевопулос Т., Георгалас И. 2014 г. Систематический обзор 342 случаев эндогенного бактериального эндофтальмита. Surv Ophthalmol. 59: 627–635. DOI: 10.1016 / j.survophthal.2014.06.002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 71. Ауде Лашоф AM, Ротова А., Собель Дж. Д., Рунке М., Паппас П. Г., Висколи С., Шламм Х. Т., Оборска ИТ, Рекс Дж. Х., Куллберг Б. Дж.. 2011 г. Глазные проявления кандидемии. Clin Infect Dis 53: 262.DOI: 10.1093 / cid / cir355. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 72. Паппас П.Г., Кауфман К.А., Андес Д.Р. и др. . 2016 г. Руководство по клинической практике лечения кандидоза: обновление 2016 г., подготовленное Американским обществом инфекционных болезней. Clin Infect Dis 62: e1 – e50. DOI: 10,1093 / cid / civ933. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 73. Мотидзуки К., Савада А., Суэмонри С., Каваками Х., Нива Ю., Кондо Ю., Окусу К., Ямада Н., Огура С., Ягути Т., Нисимура К., Кишино С. 2013. Внутриглазное проникновение микафунгина внутривенно в воспаленные глаза человека.Противомикробные агенты Chemother 57: 4027-4030. DOI: 10.1128 / AAC.02300-12. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 74. Курьян А.Е., Вайс К.Д., Флинн Х.В. мл., Смидди В.Е., Беррокал А.М., Альбини Т.А., Миллер Д. 2014 г. Эндофтальмит, вызванный видами стрептококков: клинические условия, микробиология, лечение и исходы. Am J Ophthalmol. 157: 774–780. DOI: 10.1016 / j.ajo.2013.12.026. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 75. Куриян А.Е., Шридхар Дж., Флинн Х.В. мл., Смидди В.Е., Альбини Т.А., Беррокал А.М., Форстер Р.К., Белин П.Дж., Миллер Д.2014 г. Эндофтальмит, вызванный Enterococcus faecalis : клинические особенности, чувствительность к антибиотикам и исходы. Am J Ophthalmol 158: 1018–1023. DOI: 10.1016 / j.ajo.2014.07.038. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 76. Миллер Дж. Дж., Скотт Ай Ю, Флинн Х. У. младший, Смидди У., Мюррей Т. Г., Беррокал А, Миллер Д. 2016 г. Эндофтальмит, вызываемый видами Bacillus . Am J Ophthalmol 145: 883–888. [PubMed] [Google Scholar] 77. Йодер Д.М., Скотт АйЮ, Флинн Х.В. мл., Миллер Д. 2004 г.Эндофтальмит, вызываемый Haemophilus influenzae . Офтальмология 111: 2023–2026. DOI: 10.1016 / j.ophtha.2004.05.018. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 78. Шридхар Дж., Куриян А.Э., Флинн Х.В. мл., Смидди В.Е., Венинказа В.Д., Миллер Д. 2015 г. Эндофтальмит, вызванный Serratia marcescens : клинические особенности, чувствительность к антибиотикам и результаты лечения. Сетчатка 35: 1095–1100. DOI: 10.1097 / IAE.0000000000000509. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 79. Шридхар Дж., Куриян А.Э., Флинн Х.В. мл., Миллер Д.2015 г. Эндофтальмит, вызванный Pseudomonas aeruginosa : клинические особенности, чувствительность к антибиотикам и результаты лечения. Сетчатка 35: 1101–1106. DOI: 10.1097 / IAE.0000000000000469. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 80. Дюран МЛ. 2016 г. Профилактика эндофтальмита, стр. 261–278. В Durand ML, Miller JW, Young LH (ed), Endophthalmitis. Springer International, Базель, Швейцария. [Google Scholar] 81. Группа изучения эндофтальмита ECSRS. 2007 г. Профилактика послеоперационного эндофтальмита после операции по удалению катаракты: результаты многоцентрового исследования ESCRS и выявление факторов риска.J Катаракта Рефракт Хирургия 33: 978–988. DOI: 10.1016 / j.jcrs.2007.02.032. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 82. Моисеев Э., Левингер Э. 2013. Анафилактическая реакция после внутрикамерной инъекции цефуроксима во время операции по удалению катаракты. J Катаракта Рефракт Хирургия 39: 1432–1434. DOI: 10.1016 / j.jcrs.2013.06.008. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 83. Николсон Л. Б., Ким Б. Т., Хардон Дж., Таунсенд-Пико В., Сантос К., Мошфеги А. А., Альбини Т. А., Элиотт Д., Собрин Л. 2014 г. Тяжелый двусторонний ишемический васкулит сетчатки после операции по удалению катаракты.Офтальмологические хирургические лазеры для визуализации сетчатки глаза. 45: 338–342. DOI: 10.3928 / 23258160-20140605-01. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 84. Уиткин А.Дж., Шах А.Р., Энгстром Р.Э., Крон-Грей М.М., Баумаль С.Р., Джонсон М.В., Виткин Д.И., Леунг Дж., Альбини Т.А., Мошфеги А.А., Батл И.Р., Собрин Л., Элиотт Д. 2015 г. Послеоперационный геморрагический окклюзионный васкулит сетчатки: расширение клинического спектра и возможная связь с ванкомицином. Офтальмология 122: 1438–1451. DOI: 10.1016 / j.ophtha.2015.03.016. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 85.Дюран МЛ. 2003 г. Глазные инфекции, с. 222–250. В Беттс Р.Ф., Чепмен С.В., Пенн Р.Л. (ред.), Риз и Беттс – практический подход к инфекционным заболеваниям. Липпинкотт, Уильямс и Уилкинс, Филадельфия, Пенсильвания. [Google Scholar] 86. Группа изучения эндофтальмита витрэктомии. 1996 г. Микробиологические факторы и визуальный результат в исследовании витрэктомии при эндофтальмите. Am J Ophthalmol 122: 830–846. [PubMed] [Google Scholar]

Выявление, профилактика и лечение распространенных болезней капусты

Капуста может стать жертвой целого ряда болезней, вызванных всеми основными классами патогенов – грибами, водяной плесенью, бактериями и вирусами.

Инфекции могут варьироваться по степени тяжести от неприглядной, но обычно не смертельной, такой как мучнистая роса , до почти всегда смертельной бактериальной мягкой гнили.

Некоторые из этих патогенов живут в почве, где они могут легко атаковать корни вашего урожая, а многие другие прячутся в крестоцветных сорняках, растущих поблизости.

Мы связываемся с поставщиками, чтобы помочь вам найти соответствующие продукты. Если вы покупаете по одной из наших ссылок , мы можем получить комиссию .

Читайте дальше, чтобы узнать о многих заболеваниях, которые могут повлиять на ваш урожай капусты, и о мерах, которые вы можете предпринять для их предотвращения или борьбы с ними.

1. Пятнистость листьев альтернариоза

Пятнистость листьев Alternaria вызывается двумя видами грибов: Alternaria brassicicola и A. brassicae .

Оба вида хорошо известны тем, что вызывают появление пятен на более старых тканях, но эти грибы также могут инфицировать основание развивающихся голов.

Фото Элизабет Буш, Политехнический институт и университет штата Вирджиния, Багвуд.орг.

Альтернария с большей вероятностью может вызвать заболевание, если на капусте присутствует влага и температура колеблется от 68 до 81 ° F.

Симптомы включают желтые пятна, которые увеличиваются в размерах и образуют кольца вокруг себя, как мишень или мишень. По мере отмирания ткани центры могут выпасть, что приведет к образованию дыр в листве. По мере развития болезни пятна соединяются, образуя большие участки отмершей ткани.

Борьба с пятнистостью листьев Alternaria начинается с надлежащих культурных практик.К ним относятся использование капельного орошения, дезинфекция ваших садовых инструментов, чередование посевов и удаление всего мертвого растительного материала в конце вегетационного периода.

Биопестициды, которые могут оказаться эффективными в случае вспышки, включают Bacillus amyloliquefaciens и Bacillus subtilis .

2. Бактериальная пятнистость на листьях

Существует два разных вида бактерий, вызывающих бактериальную пятнистость листьев капусты: Pseudomonas syringae pv. maculicola и Xanthomonas campestris pv. armoraciae .

P. syringae pv. maculicola может поражать все виды капустных культур. Из-за этого на листьях образуются пятна, которые вначале маленькие, а по мере их увеличения становятся темно-коричневыми или пурпурными.

Эти пятна могут соединяться вместе, образуя угловатые поражения, из-за которых листья выглядят рваными. В случае сильного заражения листва может погибнуть.

К сожалению, эта форма бактериальной пятнистости на листьях легко распространяется через брызги воды, в том числе для полива, и насекомых.Это заболевание чаще всего встречается в периоды прохладной влажной погоды.

Напротив, X. campestris pv. armoraciae чаще вызывают инфекции при более высоких температурах.

Первоначальные симптомы включают темные пятна на листьях, которые переходят в очаги поражения. Центры часто разрушаются со временем, в результате чего в листве образуются круглые дыры.

Усилия по профилактике и контролю варьируются от посадки термически обработанных семян до методов орошения, которые сводят к минимуму количество влаги, контактирующей с листвой.Севооборот также имеет решающее значение в последующие сезоны, поскольку бактерии могут перезимовать в почве.

3. Бактериальная мягкая гниль

Бактериальная мягкая гниль вызывается бактериями Pectobacterium spp. (ранее Erwinia ) и может привести к потере огромного количества культур, включая капусту.

Фактически, это одна из самых разрушительных болезней растений, известных во всем мире.

Фото Пола Бачи, Исследовательский и образовательный центр Университета Кентукки, Багвуд.орг.

Капуста может проявлять симптомы в полевых условиях, но большинство заражений происходит во время хранения.

Первые признаки инфекции – небольшие поражения, которые кажутся пропитанными водой. Они быстро увеличиваются в размерах, а инфицированная ткань растения становится коричневой и мягкой.

Часто все растение может заглохнуть.

Бактерии, вызывающие мягкую гниль, легче всего поражают растения в теплых и влажных условиях. Растения легко заражаются, потому что бактерии живут в почве.

Даже при низких температурах и менее благоприятных для заражения бактериях они могут инфицировать через раны в тканях растений, в том числе вызванные насекомыми.

Бактерии распространяются через брызги воды, садовые инструменты и насекомых, таких как личинки капусты . Кроме того, растения, которые уже поражены черной ножкой или черной гнилью, могут заразиться мягкой гнилью как вторичной инфекцией.

Существует ряд мер, которые вы можете предпринять, чтобы свести к минимуму вероятность заражения вашей капусты, от отказа от уборки урожая во влажных условиях до удаления любой почвы сухой тканью перед хранением кочанов.

Подробнее о бактериальной мягкой гнили здесь .

4. Черноногий

Черная ножка вызывается грибком Phoma lingam и разрушает корни многих видов сельскохозяйственных культур.

У молодых проростков могут появиться бледные пятна неправильной формы на листьях или стеблях, которые могут стать круглыми или овальными с серыми центрами. По мере распространения симптомов на нижней стороне листьев могут появиться пятна.

В случае серьезного заражения незрелые кочаны будут низкорослыми, и растения будут часто увядать, хотя листья остаются прикрепленными.

Первоначальные симптомы черной ножки – например, светло-коричневые, затонувшие язвы – можно увидеть у основания стеблей.

Если зараженные кочаны собирают и помещают на хранение, на листьях могут образоваться темно-коричневые или черные пятна.

Зараженные семена могут быть источником этого грибка, и он может выжить в растительных остатках. Крестоцветные сорняки также могут служить хозяевами. Если уровни заражения семян низкие, но погода благоприятна для болезней, все равно могут быть нанесены серьезные потери.

Возбудитель может распространяться при разбрызгивании дождевой воды или при орошении, а также может передаваться через садовый инвентарь.Кроме того, споры на зараженных растениях могут разноситься ветром на многие мили.

И что еще хуже, вторичные инфекции часто следуют за случаями черной ножки. Это может быть белая плесень и бактериальная мягкая гниль.

Вы мало что можете сделать, если ваш урожай инфицирован, поэтому очень важно принять меры по его предотвращению.

Удалите все крестоцветные сорняки, такие как дикий редис, желтый кресс-салат или дикая горчица. Начните с семян из надежного источника, которые, как было доказано, не содержат патогена.

Разместите растения в саду, чтобы обеспечить достаточный приток воздуха, и они быстро высохнут после дождя или росы.

Как можно скорее уберите зараженные растительные остатки с грядки. Выбрасывайте его в мусор, а не на компостную кучу.

Чередуйте посевы в течение трех-четырех лет и избегайте посадки других капустных сортов рядом с тем местом, где вы планируете выращивать капусту.

5. Черная гниль

Черная гниль, вызванная бактерией Xanthomonas campestris pv. campestris , влияет на ряд культур капусты и действительно может повлиять на капусту.

У сильно зараженных растений кочаны меньше, а их внешние листья могут отмирать.

Фото Джеральда Холмса, Strawberry Center, Cal Poly San Luis Obispo, Bugwood.org.

К сожалению, при хранении это заболевание может обостриться, в результате чего кочаны становятся несъедобными.

Первые симптомы включают пожелтение краев листа, которое затем распространяется на центр листа.Классический симптом – желтая буква «V» на средней жилке листа.

Затем сосудистая система становится черной, и инфекция распространяется по всему растению.

Эти бактерии легко распространяются в поле насекомыми, животными, оросительной, дождевой и садовой техникой. Черная гниль может заразить растения естественным путем через устьица по краям листьев или при механических повреждениях.

Учитывая потенциальную серьезность этого типа инфекции, семена обычно проверяют на черную гниль.

Посадка высококачественных семян, не содержащих X. campestris pv. campestris имеет решающее значение, и севооборот поможет защитить от заражения.

У вас также есть возможность высаживать устойчивые сорта капусты. К ним относятся Bobcat, Guardian и Defender.

«Титаник 90», «Суперкарт», «Супердейн», «Раундап» и «Кинг Коул» также показали высокую толерантность к этой болезни.

Вы можете узнать больше о том, как бороться с черной гнилью в капусте, в этом руководстве .

6. Гниль нижней части

Широко распространенный почвенный гриб, Rhizoctonia solani , особенно губителен для капусты. Растения могут заразиться от зараженной почвы.

Фото Джеральда Холмса, Strawberry Center, Cal Poly San Luis Obispo, Bugwood.org.

Первоначальные симптомы – коричневые или коричневые пятна на внешних листьях. Затем грибок проникает в центр кочана, который может полностью загнить в течение 10 дней.

Вероятность заражения растений выше, когда листья и почва влажные, а температура колеблется от 68 до 82 ° F.

После начала заражения средства управления недоступны.

Посадка в приподнятые грядки поможет защитить ваш урожай, потому что почва обычно дренируется лучше, чем если бы вы сажали ее прямо в землю. Где бы вы ни сажали, очень важно хорошо дренировать почву.

Поддержание здоровья урожая и внесение необходимого количества удобрений также поможет предотвратить эту болезнь.

Дополнительные советы по посадке см. В нашем руководстве по выращиванию капусты .

7. Клык

Кочанная капуста особенно уязвима для калы, болезни, вызываемой Plasmodiophora brassicae , водяной плесенью, которая может жить в почве более 18 лет после заражения сельскохозяйственных культур.

Фото Джеральда Холмса, Strawberry Center, Cal Poly San Luis Obispo, Bugwood.org.

Эту пагубную и долгоживущую болезнь трудно обнаружить. Зараженные старые растения увядают в жаркие дни, но часто может казаться, что они выздоравливают после захода солнца.

Патоген проникает в корневые волоски и затем образует большие булавовидные галлы, которые могут достигать пяти или шести дюймов шириной.

Корни не функционируют должным образом, а также остаются уязвимыми для заражения другими почвенными патогенами.

У зараженных саженцев появляются признаки набухания корней примерно через три недели, и они обычно погибают. Если они выживут, урожайность может быть значительно снижена, потому что рост задерживается.

Инфекция возникает, когда растения подвергаются воздействию спор, высвобождаемых из инфицированных корней.Эти споры могут распространяться с помощью поливной воды, инструментов или даже обуви.

Крестоцветные более подвержены заражению, если они растут на кислых почвах с pH 6,5 или ниже.

Когда культура заражается, эффективных методов борьбы не существует. Поскольку наиболее распространенным источником инфекции являются инфицированные трансплантаты, вам следует использовать чистые лотки и среды для посева.

Проведите тест почвы , чтобы проверить pH вашей почвы, и поправьте почву известью по мере необходимости, чтобы поднять pH минимум до 7.0 перед посадкой.

Известь подавляет развитие этого заболевания, но не предотвратит развитие кайлы полностью, если в почве уже присутствует большое количество спор.

Практикуйте длительный севооборот, если вы обнаружили инфекцию на своих грядках – подождите, чтобы снова посадить капусту на том же месте в течение шести или более лет.

8. Ложная мучнистая роса

Peronospora parasitica – водная плесень (оомицет), организм, ранее классифицированный как гриб.

Это серьезное заболевание начинается с поражений на верхней поверхности листьев, тогда как на нижней поверхности видны белые или серые массы грибковых спор.

Фото Ховарда Ф. Шварца, Государственный университет Колорадо, Bugwood.org.

Если ваши сеянцы заражены, вся сосудистая система может почернеть. Возможно, вы не сможете есть капусту, если она заразится ложной мучнистой росой.

Туман, сильная роса, высокая влажность и моросящий дождь способствуют развитию и распространению ложной мучнистой росы.Идеальная температура для заражения колеблется от 46 до 61 ° F ночью в сочетании с дневной температурой 75 ° F или ниже.

Ложная мучнистая роса представляет собой особую проблему для осенних культур в районах с влажной и мягкой зимой, например в штате Вашингтон. Патоген может продолжать заражать посевы в течение всей зимы, и это может создать почву для серьезных инфекций весной, если условия будут подходящими.

Что еще хуже, белая ржавчина может колонизировать растения-хозяева, ослабленные ложной мучнистой росой.

Есть меры, которые вы можете предпринять для предотвращения ложной мучнистой росы, например, устранение крестоцветных сорняков и предоставление растениям достаточно места для роста, а не упаковки их слишком плотно. Правильная вентиляция снизит влажность и снизит вероятность заражения.

Другой вариант – сажать урожай весной и собирать урожай летом.

Если кочанная капуста заражена ложной мучнистой росой, для борьбы с ней можно применить фунгициды.

Подробнее о ложной мучнистой росе здесь .

9. Вирус мозаики

Хотя капусту могут заразить несколько различных вирусов, вы, скорее всего, столкнетесь с вирусом мозаики.

К сожалению, не существует лекарства от вызывающих это вирулентных патогенов, поэтому лучше всего принять меры для предотвращения возникновения этого заболевания.

Вирусы мозаики распространяются через сорняки, такие как дикая горчица, дикая редька или пастушья сумочка. Борьба со всеми крестоцветными сорняками поможет снизить вероятность заражения ваших капустных растений.

Наиболее распространенными вирусами этого типа для поражения растений капусты являются вирус мозаики цветной капусты (CaMV) и вирус мозаики репы (TuMV).

Заражение бывает трудно обнаружить в начале сезона. Однако позже вены станут прозрачными. Первый признак этого часто находится у основания листа.

Далее вдоль жилок станут видны темно-зеленые участки, а на листьях появятся мертвые точки. Кроме того, рост может замедлиться.

На наружных листьях могут образовываться поражения мертвой ткани, которые обнаруживаются по всей кочане.У хранящихся кочанов могут быть мертвые точки на внутренних листьях.

Многие виды тлей могут распространять CaMV и TuMV между сорняками и культурами. Особую опасность представляют капустная тля, зеленая персиковая тля и ложнокочанная тля.

Эти тли могут передавать вирус в течение минуты после кормления зараженным растением.

Симптомы наиболее серьезны при температуре от 68 до 82 ° F.

Часто встречаются смешанные инфекции, вызванные мозаикой цветной капусты и разновидностями репы, что приводит к еще более серьезным симптомам, чем обычно вызывает любой вирус по отдельности.

Не существует лекарства от вируса мозаики, но борьба с тлей с помощью инсектицидов может помочь предотвратить заражение. Очистите свой сад от крестоцветных сорняков и утилизируйте остатки растительных остатков сразу после сбора урожая.

Узнайте больше о вирусе мозаики репы в нашем руководстве .

10. Корневая гниль Phytophthora

Водяная плесень, или оомицет, Phytophthora megasperma , вызывает корневую гниль капусты и многих других крестоцветных растений.Он переживает зиму в виде покоящихся спор внутри корневой ткани.

Фото Пола Бачи, Исследовательский и образовательный центр Университета Кентукки, Bugwood.org.

При подходящих условиях, например, когда почва влажная и температура колеблется от 55 до 77 ° F, высвобождается другой вид спор – плавающий тип, известный как зооспоры.

Зооспоры плавают в воде и заражают корни. Первые симптомы, которые вы можете увидеть, – это обесцвечивание краев листьев, которые становятся красными и пурпурными по мере отмирания корней.

По мере того, как симптомы прогрессируют до стебля, листья отмирают. Зараженные растения обычно увядают и часто погибают.

Все, что способствует хорошему дренажу почвы, поможет защитить от этого типа корневой гнили. Например, вы можете обработать почву во время посадки, чтобы она не уплотнялась, или рассмотрите возможность посадки на приподнятых грядках. И также важно избегать чрезмерного полива.

Если вы знаете, что поле или посевная зона заражена фитофторой, не выращивайте там крестоцветные и пересаживайтесь на невосприимчивые культуры в течение трех лет.

Вы также можете применять обработки почвы, такие как сульфат меди, в соответствии с инструкциями на упаковке, чтобы помочь справиться с этим заболеванием. Лечение может не спасти зараженное растение, но может предотвратить его распространение на соседние растения.

Southern Ag жидкий фунгицид меди

Сульфат меди производства Southern Ag – это , доступный на Amazon .

Другой вариант – Monterey Agri-Fos, , также доступен на Amazon .

11. Мучнистая роса

Мучнистая роса вызывается Eryisphe cruciferarum, типом грибка , который требует наличия живого хозяина, поэтому он обычно не убивает вашу капусту.

Фото доктора Партасарати Ситхапати, Сельскохозяйственный университет Тамил Наду, Bugwood.org.

Однако рекомендуется выращивать устойчивые сорта, поскольку у инфицированных растений кочаны будут меньше.

Симптомы начинаются с белых поражений на верхушке листьев. По мере развития и распространения грибка листья будут казаться белыми с обеих сторон, так как они покрыты спорами.

Посевы с большей вероятностью заразятся, когда им нужна вода. Гриб обычно зимует в крестоцветных сорняках, и споры разносятся к хозяевам.

Мучнистая роса обычно развивается при температуре 59-68 ° F, когда мало осадков и низкая влажность.

Фунгициды обычно не требуются, но если инфекция серьезная, вы можете нанести масло нима на инфицированные растения.

Очистка растений-хозяев, таких как дикий редис или дикая горчица, снизит вероятность заражения вашего урожая.

Избегайте стресса от засухи, регулярно поливая, и не используйте слишком много азотных удобрений.

12. Кольцо пятна

Кольцевая пятнистость вызвана грибком Mycosphaerella brassicicola .

Кочанная капуста заражается в саду, но это заболевание может перерасти в гниль, когда кочаны помещены на хранение, в результате чего они становятся кожистыми и сморщенными с темными поражениями.

Первыми симптомами пятнистости являются кольца на стеблях и листьях, которые кажутся пропитанными водой и окружены желтыми ореолами.

При дальнейшем распространении поражения могут расти и сливаться вместе, в результате чего все растение почернеет.

Капуста с большей вероятностью заразится кольцевым пятном, когда погода влажная и прохладная, при температуре от 59 до 70 ° F.

Удаление зараженных растений и уничтожение всех остатков сельскохозяйственных культур поможет предотвратить распространение этого патогена.

13. Белая плесень

Sclerotinia sclerotiorum – очень распространенный гриб, способный поражать более 300 различных видов растений. Хотя белая плесень поражает кочаны капусты в поле, она также может вызывать потери при хранении.

Фото Юань-Минь Шена, Центр сельскохозяйственных исследований и распространения знаний района Тайчжун, Bugwood.org.

Склеротиния – это проблема во влажную погоду при температуре от 50 до 77 ° F.

Гриб сначала поражает стебель. Оттуда он может распространяться как вниз к корням, так и вверх к листьям, вызывая их увядание и приводя к гибели растений.

Симптомы включают белый ватный нарост, который можно найти на тканях или внутри них. Отсюда и название болезни.

Отчасти эту пагубную болезнь делает грибок, который производит репродуктивные структуры, называемые склероциями. Они выглядят как черные семена и могут годами жить в почве.Иногда эти склероции видны в инфицированной ткани.

Влажные условия благоприятствуют заражению. Если после того, как началась инфекция, погода станет сухой, вы можете увидеть коричневые язвы на стебле, которые не будут развиваться дальше.

Борьба с Sclerotinia включает сочетание методов культивирования – хорошей санитарии, хорошо дренированной почвы, борьбы с сорняками и длительных севооборотов. Обработка почвы перед посадкой поможет обеспечить хороший дренаж, что очень важно для предотвращения скопления влаги.

Раннее лечение в начале инфекции, вероятно, будет более успешным, чем попытки вылечить тяжелую инфекцию, которая уже значительно прогрессировала.

Для борьбы с белой плесенью можно использовать комбинацию фунгицидов и биопестицидов. Лечение Bacillus amyloliquefaciens и Bacillus subtilis может оказаться эффективным.

Беномил – это фунгицид, который рекомендуется лечить при появлении плесени на капусте, но вы можете дважды проверить в местном отделении поддержки, чтобы определить, какие фунгициды зарегистрированы для лечения этого заболевания в вашем районе.

14. Желтые

Желтый цвет вызывается Fusarium oxysporum f. sp. конглютинанс, гриб, живущий в почве. Его споры могут сохраняться долгие годы.

Не существует хорошего метода борьбы с желтизной на капусте, и посадка устойчивых сортов – лучший способ избежать этой обезображивающей инфекции.

Фото М.Э. Бартоло, Bugwood.org.

Этот патоген проникает в сосудистую систему и часто может сразу убить своего хозяина.

У выживших растений листья тусклые и желтоватые.Начиная с основания, эти листья могут рано отмирать. Выжившие растения часто желтеют с одной стороны растения, их рост замедляется.

Это болезнь, которая способствует повышению температуры, и вероятность ее возникновения ниже 68 ° F.

Здоровый сад, здоровые головы

Как и другие культуры капусты, капуста уязвима для ряда болезней, вызываемых множеством различных патогенов.

Хорошие методы садоводства, такие как защита от сорняков и вредителей, дезинфекция оборудования и предотвращение накопления влаги, могут помочь предотвратить вспышки болезней.

Чередование посевных площадей с другими видами культур очень важно, если вы хотите выращивать капусту в месте, которое ранее было заражено.

Страдали ли ваши кочаны какой-либо из этих болезней? Дайте нам знать, как они поживают, в комментариях ниже.

А для получения дополнительной информации о выращивании капусты в вашем саду ознакомьтесь со следующими руководствами:

© ООО «Спроси экспертов». ВСЕ ПРАВА ЗАЩИЩЕНЫ. См. Наши TOS для получения более подробной информации.Фотографии продуктов через Bonide и Southern Ag. Не в титрах: Shutterstock. С дополнительным написанием и редактированием Эллисон Сидху и Клэр Грум.

О Хельге Джордж, доктор философии

Одна из самых больших радостей детства Хельги Джордж читала о редких и оранжерейных растениях, которые не росли в Делавэре. Теперь, когда она живет недалеко от Санта-Барбары, Калифорния, она рада, что многие из них растут прямо на улице! Очарованная детским открытием, что растения производят химические вещества для самозащиты, Хельга приступила к дальнейшим академическим исследованиям и получила две степени, изучая болезни растений как одну из основных патологий растений.Она имеет степень бакалавра в области сельского хозяйства Корнельского университета и степень магистра Массачусетского университета в Амхерсте. Затем Хельга вернулась в Корнелл, чтобы получить докторскую степень, изучая одну из модельных систем защиты растений. В 2009 году она перешла на полный рабочий день.

Центры вращающиеся грибковые: Центры вращающиеся грибковые

Центры вращающиеся грибковые

Центры вращающиеся грибковые Гост 8742-75

ТИП 2480 ЦЕНТРЫ ВРАЩАЮЩИЕСЯ ГРИБКОВЫЕ

Описание

Центры вращающиеся, центры упорные – Центры вращающиеся грибковые тип 2480

Центры вращающиеся грибковые для трубтип 8825 « ООО “ОМТС” Запасные части к станкам, оснастка и комплектующие.

8825-1

8825-2

8825-2-1

8825-3

8825-3-1

8825-3-2

8825-4

8825-4-1

8825-4-2

8825-5

8825-5-1

8825-6

Центры грибковые | БелСтанкоТех ООО

Центра упорные вращающиеся грибковые твердосплавные

Самая грязная часть тела человека

Самые грязные части тела человека

Пупок — самая грязная часть тела человека

Рот — место с самым грязным органом человека

Подмышки — дезодорант не поможет

Складки кожи — есть не только у людей с избыточным весом

Паховая область — место повышенного внимания

Анус — не самое грязное место, если следить за гигиеной

Уши — важно следить за чистотой

Кожа под волосами — мытье головы не только ради здоровых волос

Носоглотка — микробов много, но они не опасны

Стопы — держи ноги не только в тепле, но и в чистоте

Видео

Решения и признаки распространенных болезней томатов

Болезни фасоли и гороха

Антракноз

Корневая гниль бобов

Ржавчина

Бактериальные болезни

Вирусы мозаики

Мучнистая роса

Пятнистость листьев Cercospora

Водянистая мягкая гниль

Что такое коронная гниль и как с ней бороться

Что такое болезнь коронной гнили?

Признаки болезни коронной гнили

Как остановить гниение кроны?

Бактериальные и грибковые заболевания голубики

Бактериальные болезни

Бактериальный рак

Коронный галл

Грибковые болезни под землей

Корневая гниль Armillaria

Корневая гниль Phytophthora

Наземные грибковые болезни

Альтернативная гниль плодов

Ботритис

Язвенная болезнь Fusicoccum (или иногда еще называемая язвой Годронии)

Мумия ягодная

Спелая гниль (иногда еще называемая антракнозом)

Серебряный лист

Фитофтороз

Незначительные грибковые заболевания

Двойное пятно

Листовая ржавчина

Мучнистая роса

Язва стебля

Язвы веточки

Ведьмин метла

Список литературы

Борьба с корневой гнилью Phytophthora на рождественских елках ели Fraser

Бактериальный и грибковый эндофтальмит

РЕЗЮМЕ

ТАБЛИЦА 1

ПАТОГЕНЕЗ

КЛИНИЧЕСКИЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ

ДИАГНОСТИКА

Отбор проб и методы культивирования

Методы молекулярной диагностики