Облучатель бактерицидный

 Регистрационное удостоверение № ИМ-7.100090/1806  выданное 28.06.2018 г. МЗ РБ

Наиболее мощное средство для защиты от Коронавируса COVID-19 — бактерицидные облучатели.

Они созданы для обеззараживания воздуха в общественных помещениях с большим скоплением людей, а также в квартирах и частных домах для предотвращения распространения заболеваний, передающихся воздушно-капельным путем.

Эффективность работы приборов достигает до 99,9%.

  Конструкция бактерицидного облучателя предназначена для установки на стену или потолок, что обеспечивает полное обеззараживание помещения.

  Корпус изготовлен из листовой стали и окрашен в белый цвет с применением технологии порошковой окраски.

  Облучатель относится к разряду, комбинированных – имеет открытую и экранированную лампы.

  В двухламповых  облучателях предусмотрено раздельное включение ламп.

ОБН-150:

ОББ 2х15:

ОБНП-30:

ОБП 01-30:

ОБН 01:

  Источником излучения облучателей являются бактерицидные ртутные лампы низкого давления TUV (Philips), излучающие ультрафиолетовые лучи с длиной волны 253,7 нм, губительные для различных бактерий, вирусов и микроорганизмов, находящихся в воздухе и на поверхностях помещений.
   Обеззараживание помещения происходит за счет прямого облучения и конвекции слоев воздуха.

Облучатель бактерицидный ТУМАР ОБНП – 1х15 настенно-потолочный

Назначение: Облучатель открытого типа, используется для быстрого обеззараживания воздуха и поверхностей жестким ультрафиолетом в отсутствие людей, является эффективным средством профилактики и борьбы с инфекциями, передающимися воздушно-капельным путем.

Используется: в медицинских учреждениях: противотуберкулезные, инфекционные, организации ОЛС, роддома и т.д.; в немедицинских учреждениях: образовательные учреждения, спортивные, производственные помещения, предприятия общественного питания; в местах заключения: следственные изоляторы, тюрьмы, колонии и другие исправительные учреждения; то есть там, где необходимо производить обеззараживание воздуха ультрафиолетом.

Облучатель «ТУМАР» является зарегистрированной медицинской техникой в РК.
Регистрационное удостоверение: № РК-МТ-5№017701 от 28.03.2018 г.

Произведено в Казахстане. Сертификат отечественного товаропроизводителя CT-KZ 1 115 00175 от 25.06.2021г.

Ресурс ламп TIBERA UVC (LEDVANCE) – 10800 часов без спада бактерицидного потока на протяжении всего срока службы ламп.
У Вас всегда будет гарантированный результат и экономия на замене ламп.

Надёжность и высокое качество обеспечивается использованием комплектующих европейского производства: Франция, Германия и Россия.

Облучатели обладают повышенной производительностью за счёт и комплектации их лампами TIBERA UVC (LEDVANCE).
А это значит, что вы сможете добиваться лучшего результата за меньшее время.

Технический паспорт содержит «Методику подбора облучателя «ТУМАР», а также таблицу быстрого подбора.
У вас всегда будет обоснование для проверяющих органов в правильности использования оборудования.

Мы всегда готовы помочь Вам правильно рассчитать параметры облучателя под ваши требования.
Предоставим официальный расчёт подбора оборудования. Вам достаточно связаться с нашим отделом продаж.

ОБРН-2х15 АЗОВ – облучатель-рециркулятор бактерицидный (двухламповый) 022791

Принцип работы рециркулятора основан на обеззараживании воздуха ультрафиолетовым бактерицидным излучением с длиной волны 253,7 нм в процессе его прохождения через корпус прибора благодаря работе встроенного вентилятора. Вентилятор поглощает воздух равномерно, также равномерно обеззараживая его, обеспечивая постоянную циркуляцию. Ультрафиолетовые лучи не проникают из камеры, обеспечивая надежную защиту людям, находящимся в помещении во время работы облучателя.

Корпус данного рециркулятора воздуха покрыт порошковой эмалью производства Финляндии, что повышает антикоррозийную устойчивость прибора.

Область применения

Облучатель – рециркулятор бактерицидный настенный предназначен для обеззараживания воздуха лечебно-профилактических учреждений, парикмахерских залов, косметических, маникюрных, педикюрных кабинетов, спортивных, детских, учебных, производственных (цеха пищевой промышленности, овощехранилища и т.д.), животноводческих, птицефабрик, жилых и других помещений в присутствии людей и животных.

Принцип работы облучателя основан на обеззараживании воздуха ультрафиолетовым бактерицидным излучением с длиной волны 253,7 нм в процессе протекания его через полость облучателя.
Область применения – лечебные и детские учреждения (поликлиники, роддома, санатории и др.), а так же при необходимости, промышленные, административные, общественные и складские помещения.

Перед применением необходимо ознакомиться с инструкцией по применению (паспортом изделия) или получить консультацию специалиста

Преимущества

• Улучшенный дизайн
• Принцип действия облучателя основан на обеззараживании прокачиваемого воздуха вдоль безозонной бактерицидной лампы низкого давления, дающей излучение с длиной волны 253,7 нм внутри кожуха облучателя
• Покрытие порошковой эмалью (пр-ва Финляндии) повышает антикоррозийную устойчивость
• Класс электробезопасности и степень защиты: класс 1, тип В, по ГОСТР50267.0-92
• Высокая производительность (50 м 3/час, 95% обеззараживания)
• Использование комплектующих европейских производителей (ламподержатели BJB- Германия, пускорегулирующая аппаратура ELECTROSTART- Болгария)
• Оптимальное соотношение «цена-качество»
• Источник облучения и дезинфекции воздуха: бактерицидная безозоновая лампа PHILIPS TUV — 2×15W/G13T8

Рециркулятор воздуха ОБРН-2х15 содержит только импортные комплектующие

• Бактерицидные лампы Philips TUV 15W / Голландия (лампы и стартеры не входят в комплект поставки)
• Ламподержатели — BJB (Германия)
• Пускорегулирующая аппаратура — ELECTROSTART (Болгария)

Технические характеристики

• Исполнение: настенный
• Тип рециркулятора: закрытый
• Материал корпуса: алюминий
• Количество ламп: 2
• Мощность ламп, Вт: 15
• Укомплектование лампами: нет
• Укомплектование стартерами: нет
• Производительность, м³\ч: 50
• Рекомендуемый объем помещения, м³: 50
• Категории помещений: I, II, III, IV, V
• Наличие таймера наработки ламп: нет
• Возможность облучения в присутствии людей: есть
• Электробезопасность: класс I
• Срок службы, лет: 5
• Срок службы ламп, ч: 8 000
• Электропитание, В\Гц: 220\50
• Потребляемая мощность, Вт: 60
• Гарантийный срок, мес: 24
• Длина, мм: 146
• Ширина, мм: 144
• Высота, мм: 635
• Вес, кг: 4

МБОУ “Школа-интернат №22” – Информация о специальных условиях для обучения инвалидов и лиц с ОВЗ

Сведения о специально оборудованных учебных кабинетах:

В школе имеется 23 оборудованных кабинетов для учебных занятий, из них: компьютерный класс (кабинет информатики), кабинет музыки, 2 кабинета технологии, зал для занятия хореографии, спортивный зал. Для коррекционных занятий оборудовано 3 кабинета психолога и кабинет для занятия мелкой моторики. Для логопедических занятий оборудовано 5 кабинетов.

Сведения об объектах для проведения практических занятий, приспособленных для использования детьми инвалидами и лицами  с ограниченными возможностями здоровья:

В школе имеется 1 мастерская для мальчиков по направлению столярное дело, оснащённая специальным оборудованием и рабочими местами. Кабинет технологии для девочек оснащён швейным оборудованием, рабочими местами и расходно – прикладными материалами, кабинет кулинарии оснащен всеми необходимыми предметами быта, кухонной утварью и посудой.

Сведения о библиотеке, приспособленной для использования инвалидами и лицами с ограниченными возможностями здоровья:

Библиотечный фонд школы – 36 165 экземпляров. Читальный зал школьной библиотеки оборудован 8 рабочими местами и 1 компьютерное место, имеющие доступ к сети интернет. В библиотеке предусмотрена зона с телевизором для проведения мероприятий. Подробнее на → странице ←

материал скопирован с сайта http://school78ke

   Сведения об объектах спорта, приспособленных для использования инвалидами и лицами с ограниченными возможностями здоровья:

           В школе-интернате имеется спортивный зал с двумя раздевалками для девочек и мальчиков. Площадь спортивного зала 123,5 м² . В спортивном зале в  наличии имеется следующее оборудование и спортивный инвентарь: спортивный козел (1), гимнастический мостик (2), гимнастический мат (2), штанги (2), стол для  шашек (5), сетка волейбольная (1), стол теннисный (2), гантели (6), игра “Хоккей” (1), игра “Футбол” (1), кольцо баскетбольное (2), крепление лыжное (30), лыжи (30), ботинки лыжные (30), палки лыжные (26), мяч волейбольный (8), мячи разные (40), мяч футбольный (6), набор бадминтона (2), насос воздухоручной (2), обруч гимнастический (10), палка гимнастическая (7), секундомер (2), скакалка (10), стенка гимнастическая (6), турник настенный (3), уголок для подтягивания (3), уголок для пресса (1).
На территории школы – интерната имеется огороженная спортивная площадка для проведения спортивных занятий на свежем воздухе, площадью 250 м² .

Так же имеется беговая дорожка на 60м, 150м, 250м.

           Сведения о средствах обучения и воспитания, приспособленных для использования детьми с инвалидами и лицами с ограниченными возможностями здоровья:

          Печатные: учебники и учебные пособия, книги для чтения, хрестоматии, рабочие тетради, раздаточный материал, дидактический материал.

          Наглядные плоскостные: плакаты, карты настенные, иллюстрации настенные, магнитные доски, портреты  писателей, поэтов, музыкантов.

          Технические средства обучения: интерактивные доски, мультимедийные компьютеры, средства телекоммуникации, мультимедийные проекторы, принтеры, сканеры, телевизоры.

          Аудиовизуальные и мультимедийные: слайды, слайд-фильмы, фильмы на цифровых носителях.

          Спортивное оборудование: спортивные снаряды, мячи, лыжи и другой спортивный инвентарь.

          Музыкальные инструменты: синтезатор (1), фортепиано (1), маракасы (2), бубен (1), кастаньеты (4), ложки (20), барабан (1), румба (3), металлофон (1).         Театральный реквизит, костюмы для танцев.

Сведения об обеспечении беспрепятственного доступа в здание образовательной организации:

Имеется беспрепятственный вход в здание школы-интерната, беспрепятственное передвижение по территории, возможность въезда транспортного средства для посадки/высадки инвалида. Внутри здания установлено лестничное ограждение с 2-х уровневыми поручнями, коридор первого этажа также оборудован поручнями. Для маломобильных детей имеется устройство для межэтажной транспортировки.

     Сведения о специальных условиях питания:

     Обеденный зал рассчитан на 84 посадочных места, оборудован раковинами для мытья рук. В школе-интернате 4-х разовое горячее питание.

     Сведения о специальных условиях охраны здоровья: 

     Медицинский блок школы-интерната состоит из кабинета первичного приема, процедурного кабинета, 2-х изоляторов (на 4 мест).

     Медицинский кабинет оснащён медицинским оборудованием: комплекс медицинский диагностический КМД “Здоровый ребенок”, плантограф компьютерный ПКС – 01, тренажер для глаз “Лечи – играй”, галоингалятор сухой солевой, АПК для скрининга психического и социального здоровья    обучающихся, осветитель таблиц для исследования остроты зрения ОТИЗ – 40-01, электронный тонометр для измерения артериального давления UA – 777, облучатель бактерицидный настенный ОБН – 75, ОБН – 150, рециркулятор УФ – бактерицидный РБ – 07 – “Я-ФП”, рециркулятор УФ (РВУ), рециркулятор  СПР-1.

Сведения о доступе к информационным системам и информационно-телекоммуникационным сетям, приспособленным для использования инвалидами и лицами с ограниченными возможностями здоровья:

Услуги  телефонной связи  предоставляет  ООО «Ростелеком», услуги Интернет связи предоставляет ООО «Е-Лайт-Телеком». Все стационарные ПК имеют доступ в Сеть Интернет по выделенной линии. Доступ к ПК, возможность обучаться и работать на ПК практически обучающиеся имеют только в кабинете информатики (компьютерном классе). На всех ПК школы установлены системы контентной фильтрации и антивирусные программы.

материал скопирован с сайта http://school78kem.r

     Сведения об электронных образовательных ресурсах, к которым обеспечивается доступ инвалидов и лиц с ограниченным возможностями здоровья:

Министерство просвещения РФ

Федеральный портал “Российское образования”

Информационная система “Единое окно доступа к образовательным ресурсам”

Единая коллекция цифровых образовательных ресурсов

Федеральный центр информационно-образовательных ресурсов

    Сведения о наличии специальных технических средств обучения коллективного и индивидуального пользования для инвалидов и лиц с ограниченными возможностями здоровья:

     В учебной, внеурочной и творческой деятельности обучающихся используются специальные технические средства обучения коллективного и индивидуального пользования: персональные компьютеры – 33 шт., в учебных кабинетах установлены 23 шт. (без учёта кабинета информатики), в кабинете информатики (компьютерном классе) -5 шт.,  ноутбуков – 7 шт., интерактивных досок – 2 шт., мультимедийных проекторов – 4 шт., устройств офисного назначения (принтеры, сканеры, МФУ) – 19 штук.

     Сведения о наличии условий для беспрепятственного доступа в общежитие, интернат: общежитие/интернат не предусмотрен(о)

    Сведения о количестве жилых помещений в общежитии, интернате, приспособленных для использования инвалидами и лицами с ограниченными возможностями здоровья: общежитие/интернат не предусмотрен(о)материал скопирован с сайта http://school78kem.ru/

Лампы бактерицидные

Облучатели (лампы) бактерицидные применяются для дезинфекции воздуха в помещениях.

Более полувека завод ЭМА производит и постоянно совершенствует выпускаемый ассортимент высококачественных источников бактерицидного ультрафиолетового излучения. Облучатели бактерицидные – наиболее используемые и эффективные источники ультрафиолетового излучения. Купить бактерицидные облучатели вы можете на нашем сайте!

Назначение

Облучатель бактерицидный обыкновенный ОББ (КБИ) 1 × 15 предназначен для обеззараживания воздуха в медицинских учреждениях, бытовых помещениях, а также в общественных местах..

Приобретая у нас ультрафиолетовый облучатель , вы можете использовать его в повседневной жизни, например, для профилактики и контроля инфекций, передающихся воздушно-капельным путем (грипп, тонзиллит, стоматит, ОРЗ, ОРВИ и т. Д. .). Облучатель можно использовать в помещении, рядом с людьми.

Виды облучателей

Цена и качество бактерицидных ультрафиолетовых облучателей моделей ОБН (WBI) -150 (настенный), ОБП (CBI) -300 (потолочный) и ОБП (МБИ) -450 (мобильный) марки производства Ema достигли идеального уровня. комбинация.Эти типы облучателей используются для быстрой дезинфекции больших объемов воздуха и поверхностей в медицинских, терапевтических, промышленных, общественных и детских учреждениях, а также в пищевой промышленности.

Наши облучатели используют для обеззараживания воздуха , а также для оборудования, продуктов и упаковки.

Бактерицидные лампы производства ЭМА фабрики генерируют ультрафиолетовое излучение, уничтожая вирусы, грибки и инфекционные бактерии, содержащиеся в воздухе и на рабочей поверхности.

Ультрафиолетовые облучатели способны непрерывно обеспечивать практически полное уничтожение вредных микроорганизмов в любом помещении, будь то больница, клиника, медицинское учреждение, производство или общественное учреждение.

Бактерицидная лампа успешно применяется для непрерывной дезинфекции воздуха как с целью предотвращения вероятного бактериального заражения, так и для обеспечения гигиены различных поверхностей, инструментов и оборудования. Купить бактерицидную лампу вы можете, связавшись с нашими менеджерами!

Мы гарантируем качество нашей продукции – приобретенные облучатели прослужат долгие годы, требуется лишь периодическая замена самой бактерицидной лампы, срок службы которой составляет 9000 часов.Мы используем бактерицидные лампы только самого высокого качества (производство Венгрия).

Все модели ультрафиолетовых облучателей всегда в наличии.

Мы также производим полностью закрытые установки обеззараживания воздуха – Бактерицидные рециркуляторы.

Бактерицидное воздействие ультрафиолетового излучения с длиной волны 310 нм на бактерии полости рта | BMC Oral Health

Устройство для УФ-светодиодного облучения

Были изготовлены небольшие светодиодные устройства для облучения UVB (310 нм) и UVC (265 нм) (рис.1). Облучающий зонд имел форму синего светодиода типа ручки. Плотность мощности устройства UVB и устройства UVC составляла 1,75 мВт / см ² и 1,77 мВт / см ² , соответственно. Оба они питались постоянным током УФ-системы управления (10–200 мА и 12 В). Токи светодиода 310 нм и светодиода 265 нм при напряжении 12 В составляли 70 мА и 150 мА (свойство каждого устройства определялось предварительным экспериментом NIKKISO), соответственно, для получения приблизительной освещенности на поверхности каждая хорошо в экзаменах.Величина воздействия в каждый момент облучения рассчитывалась как E = P × t, где E – плотность энергии (доза) в мДж / см ² , P – плотность мощности (освещенность) в мВт / см ² , а t время в секундах. Данные представлены в таблице 1.

Прототип светодиодного облучателя UVB (310 нм) и UVC (265 нм)

Бактериальные штаммы и питательная среда

Агар Brain-Heat Infusion (BHI) был приобретен у Becton Dickinson and Company (Franklin Lakes, NJ). Модифицированный бульон GAM и модифицированный агар GAM были приобретены у Nissui Pharmaceutical Co., LTD (Токио, Япония). Porphyromonas gingivalis ATCC 33277, Fusobacterium nucleatum ATCC 25586, Streptococcus sanguinis ATCC 10556 и Streptococcus mutans ATCC 25175 были приобретены из Американской коллекции типовых культур (Манассас, Вирджиния). P. gingivalis и F. nucleatum выращивали на бульоне GAM и GAM агаре, а S. sanguinis и S. mutans выращивали на бульоне BHI и агаре BHI в анаэробной камере с Anaeropack Kenki (Mitsubishi Gas Chemical Company, Токио, Япония) при 37 ° C.

Эпителиальные клетки полости рта

Клеточная линия плоскоклеточного эпителия полости рта человека Ca9–22 была получена из центра биоресурсов RIKEN (Ибараки, Япония). Клетки Са9–22 культивировали в среде Игла, модифицированной Дульбекко (DMEM) (Sigma-Aldrich, St.Louis, MO), содержащий 10% фетальной бычьей сыворотки (Hyclone Laboratories, Inc., Logan, UT), 100 Ед / мл пенициллина и 100 мкг / мл стрептомицина в увлажненной атмосфере с 5% CO ₂ при 37 ° C.

Бактерицидные эффекты

Все бактерии выращивали при 37 ° C до стационарной фазы роста. Бактериальные клетки собирали центрифугированием (8000 × g в течение 10 мин) и повторно суспендировали в стерильном фосфатно-солевом буфере (PBS) с получением суспензии с оптической плотностью (OD) 0.4–0,5 при 600 нм с помощью фотоспектрометра. В экспериментах использовали аликвоты по 0,1 мл каждая. Бактериальные суспензии по 0,1 мл разливали в 96-луночные планшеты и облучали UVB (310 нм) -LED в течение разного времени (10, 30, 60 и 120 с). Расстояние от источника света УФ-светодиода до бактериальной культуры (дно 96-луночного планшета) составляло 10 мм. Бактерицидный эффект облучения UVC (265 нм) -LED использовался в качестве эталона. После облучения каждую бактериальную суспензию разбавляли и высевали на чашку с агаром.Результаты представляли собой количество колоний на каждой чашке с агаром и рассчитывали как КОЕ / мл.

После инкубации в течение 1–7 дней подсчитывали колонии на чашках. Бактерицидный эффект выражали в% жизнеспособности бактерий, рассчитанной по следующей формуле:% жизнеспособности = колониеобразующая единица (КОЕ) / мл (10, 30, 60 и 120-секундное облучение) / КОЕ / мл (0-секундное облучение). × 100.

Цитотоксичность для эпителиальных клеток полости рта

Токсичность УФ-светодиодного излучения для эпителиальных клеток полости рта измеряли с использованием набора Cell Counting Kit-8 (Dojindo, Tokyo, Japan) из анализа WST-8.Вкратце, клетки Ca9–22 высевали в 96-луночные планшеты для тканевых культур с плотностью 2 × 10 ⁴ клеток / лунку. Клетки промывали трижды фосфатно-солевым буфером (PBS) и добавляли 0,1 мл PBS в каждую лунку. Затем клетки облучали УФ-светодиодом в количестве 105, 210, 315 и 420 мДж / см ² , что равно облучению в течение 60, 120, 180 и 240 с. После воздействия УФ-В светом супернатанты удаляли, в лунки добавляли свежую среду DMEM, а затем клетки инкубировали до желаемых моментов времени.Активность дегидрогеназы в супернатантах измеряли в соответствии с инструкциями производителя.

Производство оксида азота в эпителиальных клетках полости рта

Монослои клеток Ca9–22 на предметном стекле камеры (Thermo Fisher Science, Уолтем, штат Нью-Йорк) облучали с помощью УФ-светодиода с длиной волны 310 нм в течение 60 с. Через 24 ч продукцию оксида азота в клетках Ca9–22 исследовали с использованием DAF2-DA (SEKISUI MEDICAL Co., Ltd., Токио, Япония).

Индуцируемая продукция синтазы оксида азота в эпителиальных клетках полости рта

Монослой клеток Ca9–22 на предметном стекле камеры облучали с помощью УФ-светодиода 310 нм в течение 60 с, а затем инкубировали в течение 24 часов.Клетки трижды промывали PBS и фиксировали 4% параформальдегидом в течение 10 мин. После трехкратной промывки PBS в камеру добавляли 0,2% TritonX-100 на 5 мин. После повторной промывки PBS клетки инкубировали с блокирующим буфером (5% козья сыворотка / 0,3% TritonX-100) в течение 1 часа. После трехкратной промывки PBS клетки инкубировали с кроличьим моноклональным антителом против iNOS (ab178945: Abcam, Кембридж, Великобритания) при 4 ° C в течение ночи. После трехкратной промывки PBS клетки инкубировали с козьим антителом против кроличьего IgG (H + L) Alexa Fluor® 488 (Life Technologies Japan Inc., Токио, Япония) за 1 час. После пятикратной промывки PBS ядра клеток окрашивали DAPI (BioGenex, Fremont, CA). Затем клетки наблюдали с помощью конфокального лазерного сканирующего микроскопа (Leica Microsystems, Welzlar, Германия).

Индуцируемая продукция синтазы оксида азота в эпителиальных клетках полости рта (метод Плимера)

Иммуногистохимические исследования проводили с использованием метода окрашивания полимеров с помощью Histofine Simple Stain MAX-PO (R) (NICHIREI, Токио, Япония). Монослой клеток Ca9–22 на предметном стекле камеры облучали UVB-светодиодом с длиной волны 310 нм в течение 60 с, а затем инкубировали в течение 24 часов.Клетки трижды промывали PBS и фиксировали 4% параформальдегидом в течение 10 мин. После трехкратной промывки PBS в камеру добавляли 0,2% TritonX-100 на 5 мин. После повторной промывки PBS клетки инкубировали с блокирующим буфером (5% козья сыворотка / 0,3% TritonX-100) в течение 1 часа. После трехкратной промывки PBS клетки инкубировали с кроличьим моноклональным антителом против iNOS (ab178945: Abcam, Кембридж, Великобритания) при 4 ° C в течение ночи. После трехкратного промывания PBS клетки инкубировали с меченным пероксидазой хрена аминокислотным полимером против кроличьего иммуноглобулина [Nichirei Simple Stain MAX, PO (R) kit, Nichirei, Co., Токио, Япония] в течение 60 мин при комнатной температуре. После пятикратной промывки PBS срезы инкубировали в растворе субстрата пероксидазы (ImmPACT DAB Substrate, VECTOR LABORATORIES Inc., Калифорния, США) до получения желаемого окрашивания. После пятикратной промывки PBS ядра клеток окрашивали гематоксилином. Экспрессию INOS анализировали с помощью макроса NIH-ImageJ. Цвета гематоксилина и DAB были разделены цифровым способом с использованием метода двухцветной деконволюции Ruifrok и Johnston, реализованного в виде макроса NIH-ImageJ.Затем экспрессию iNOS анализировали как отношение цвета DAB, которое рассчитывали путем деления степени окрашивания DAB на количество ядер.

ПЦР в реальном времени

Клетки Ca9-22 облучали с помощью 310 нм UVB-LED в течение 60 с, а затем инкубировали в течение 24 часов. Тотальную РНК экстрагировали из клеток с помощью реагента TRIzol в соответствии с инструкциями производителя (Life Technologies). Комплементарную ДНК (кДНК) синтезировали из общей РНК с использованием ReverTra Ace -α- (TOYOBO, Осака, Япония).ПЦР в реальном времени выполняли с использованием SYBR green Real-time PCR Master Mix (TOYOBO Osaka, Япония) для анализа экспрессии гена iNOS (GAPDH используется в качестве гена домашнего хозяйства). Протокол ПЦР состоял из 40 циклов денатурации при 95 ° C. Набор праймеров для iNOS был 5′-TCT GCT GGC TTC CTG CTT TC-3 ‘(прямой) и 5′-CTG TCC TTC TTC TTC GCC TCG TA-3’ (обратный), а набор праймеров для GAPDH составлял 5 ′ -TTT GGT ATC GTG GAA GGA CTC A-3 ′ (вперед) и 5′-ATC TCG GGT GTG GTA GGT GA -3 ′ (обратный). Уровни экспрессии РНК сравнивали с использованием метода ΔΔCt.

Производство перекиси водорода в эпителиальных клетках полости рта

Производство перекиси водорода в культурах клеток Ca9–22 измеряли с помощью набора для анализа перекиси водорода / пероксидазы Amplex® Red (Invitrogen, Калифорния, США) в соответствии с инструкциями производителя. Вкратце, монослой клеток Ca9–22 в 96-луночных планшетах облучали 310 нм UVB-LED в течение 60 с. Среду заменяли реакционной смесью в фосфатном буфере Кребса-Рингера, состоящей из 145 мМ NaCl, 5,7 мМ фосфата натрия, 4.86 мМ KCl, 0,54 мМ CaCl, 1,22 мМ MgSO ₄ , 5,5 мМ глюкозы, pH 7,35 и инкубировали при 37 ° C в течение 0, 1, 3 и 6 часов. Затем измеряли флуоресценцию в лунках с помощью считывающего устройства для микропланшетов (возбуждение при 550 нм, испускание при 590 нм).

Бактерицидное действие оксида азота

DEA NONOate, донор оксида азота, добавляли к 0,1 мл бактериальных суспензий (OD 0,4–0,5 при 600 нм в PBS) в 96-луночных планшетах. Через час суспензии разбавляли и высевали на чашки с агаром и инкубировали в течение 1-7 дней при 37 ° C в анаэробных условиях.Затем подсчитывали колонии на чашках с агаром и рассчитывали% жизнеспособности.

Бактерицидное действие перекиси водорода

Перекись водорода (1 мкМ и 1 мМ) добавляли к 0,1 мл бактериальных суспензий (ОП 0,4–0,5 при 600 нм в PBS) в 96-луночных планшетах. Через час суспензии разбавляли и высевали на чашки с агаром и инкубировали в течение 1-7 дней при 37 ° C в анаэробных условиях. Затем подсчитывали колонии на чашках с агаром и рассчитывали% жизнеспособности.

Статистический анализ

Данные каждого исследования были выражены в виде среднего значения ± стандартная ошибка среднего и проанализированы с помощью одностороннего дисперсионного анализа (ANOVA). Нулевые гипотезы об отсутствии различий отклонялись, если значения p были <0,05.

Исследовательское клиническое исследование безопасности и бактерицидного действия ультрафиолетового излучения С 222 нм у здоровых людей

Абстрактные

Введение

Инфекция области хирургического вмешательства – одно из самых серьезных осложнений хирургического лечения.Однако оптимальная процедура предотвращения таких инфекций остается неисследованной. Ультрафиолетовое излучение C (UVC) с короткой длиной волны обладает высоким бактерицидным действием; однако он цитотоксичен. Тем не менее, учитывая, что УФС с длиной волны 222 нм достигает только рогового слоя, он не влияет на клетки кожи. Это исследование было направлено на изучение безопасности УФ-излучения с длиной волны 222 нм и изучение его эффекта стерилизации кожи у здоровых добровольцев.

Методы

Это испытание проводилось на 20 здоровых добровольцах.Спину испытуемого облучали УФС с длиной волны 222 нм при 50–500 мДж / см ² и оценивали вызванную эритему (покраснение кожи). Затем спину облучали максимальным количеством ультрафиолетового излучения, не вызывающего эритему, и культивировали мазки с кожи до и после облучения. Было измерено количество колоний, образовавшихся через 24 часа. Кроме того, димер циклобутенпиримидина (ЦПД) как индикатор повреждения ДНК измеряли с использованием кожных тканей необлученных и облученных областей.

Результаты

У всех субъектов не было эритемы при всех дозах. Спину субъекта облучали при 500 мДж / см ² , и количество бактериальных колоний в культуре мазка с кожи было значительно уменьшено с помощью УФ-излучения с длиной волны 222 нм. Количество CPD, образовавшееся в облучаемой области, было немного, но значительно выше, чем в необлученной области.

Заключение

УФС с длиной волны 222 нм при 500 мДж / см ² представлял собой безопасную дозу облучения и обладал бактерицидным действием.Ожидается, что в будущем УФ-излучение с длиной волны 222 нм будет способствовать предотвращению периоперационной инфекции.

Образец цитирования: Fukui T, Niikura T., Oda T, Kumabe Y, Ohashi H, Sasaki M, et al. (2020) Исследовательское клиническое испытание безопасности и бактерицидного действия ультрафиолетового излучения С 222 нм у здоровых людей. PLoS ONE 15 (8): e0235948. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0235948

Редактор: Фелипе Даль Пиццол, Universidade do Extremo Sul Catarinense, БРАЗИЛИЯ

Поступила: 29 октября 2019 г .; Принят в печать: 24 июня 2020 г .; Опубликовано: 12 августа 2020 г.

Авторские права: © 2020 Fukui et al.Это статья в открытом доступе, распространяемая в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии указания автора и источника.

Доступность данных: Все соответствующие данные находятся в документе и его файлах с вспомогательной информацией.

Финансирование: Это исследование в основном финансируется Департаментом ортопедической хирургии Высшей школы медицины Университета Кобе и частично поддерживается Ushio Inc.включая аренду оборудования для УФ-облучения. Финансирующее агентство предоставило поддержку в виде заработной платы авторам (H.O., M.S. и T.I.). Их конкретные роли заключаются в следующем; H.O .: курирование данных и методология, M.S .: исследование и методология, T.I .: концептуализация и курирование данных. Финансирующие организации не играли никакой роли в дизайне исследования, сборе и анализе данных, принятии решения о публикации или подготовке рукописи.

Конкурирующие интересы: H.O., M.S. и Т.И.получили поддержку в виде заработной платы от USHIO Inc., Токио, Япония. Конкретные роли этих авторов сформулированы в разделе «Авторский вклад». Это не влияет на нашу приверженность политике PLOS ONE в отношении обмена данными и материалами.

Введение

Хирургическое лечение сопряжено с риском некоторых осложнений, и инфекция области хирургического вмешательства (ИОХВ) признана одним из наиболее серьезных осложнений. Как только инфекция установлена, лечение усложняется, что ложится тяжелым бременем как на пациента, так и на медицинский персонал.Например, послеоперационная инфекция после остеосинтеза перелома кости иногда приводит к остеомиелиту, и лечение может занять несколько лет, что в худшем случае приводит к ампутации конечности. Хотя введение антибиотиков на основе установленных руководств обычно используется для предотвращения SSI, SSI по-прежнему остается частым явлением. Поэтому необходимо установить более эффективные меры предосторожности [1].

Есть два пути заражения бактериями, вызывающими ИОХВ.Одно из них – эндогенные вещества, такие как резидентные бактерии на коже пациента и слизистой оболочке носа, а другое – экзогенные бактерии, такие как бактерии, переносимые воздухом [2, 3]. Хотя в настоящее время нет единого мнения о том, что более важно, во многих сообщениях подчеркивается участие эндогенной бактериальной инфекции [4, 5]. Поэтому за основу можно рассматривать профилактику эндогенной бактериальной инфекции [6]. Простыня Incise широко используется и эффективна для предотвращения SSI; однако его можно было удалить во время операции, что увеличило частоту инфицирования из-за размножения эндогенных бактерий вокруг разреза [7].Для подавления как эндогенных, так и экзогенных бактериальных инфекций необходимо постоянно подавлять заражение хирургической раны из-за размножения внутренних кожных бактерий во время операции, даже в хирургических полях, достаточно продезинфицированных перед операцией.

Ультрафиолетовое излучение подразделяется на три следующих диапазона: ультрафиолетовое излучение A (UVA), ультрафиолетовое излучение B (UVB) и ультрафиолетовое излучение C (UVC) в зависимости от длины волны, в зависимости от его биологического действия.UVC имеет короткую длину волны от 200 до 280 нм и высокий коэффициент поглощения ДНК; обладает высоким бактерицидным действием [8]. Предыдущий отчет продемонстрировал, что интраоперационное облучение УФС с длиной волны 254 нм от облучателя, установленного на потолке операционной, снижает частоту послеоперационных инфекций [9]. В настоящее время устройства, используемые для облучения УФС с длиной волны 254 нм, одобрены для лечения инфицированных ран в США и Канаде и используются в клинической практике [10–12]. Однако облучение УФС цитотоксично, и существует риск развития злокачественной опухоли; таким образом, желателен более безопасный способ.

При воздействии на кожу УФС с длиной волны 254 нм проходит через роговой слой и достигает эпидермиса, поражая клетки эпидермиса. Напротив, УФС с длиной волны 222 нм имеет высокий коэффициент поглощения белка [13] и достигает только самого внешнего рогового слоя эпидермиса [14]. Следовательно, он не влияет на клетки кожи; следовательно, теоретически он может быть более безопасным методом УФ-облучения.

Предположительно, облучение ультрафиолетовым излучением с длиной волны 222 нм может значительно снизить частоту ИОХВ и может быть клинически применено к операционному полю.Однако, насколько нам известно, хотя безопасность и стерилизующий эффект этого типа облучения были продемонстрированы в исследовании на животных [15], они никогда не изучались на людях. Таким образом, это исследование было направлено на изучение возможности и потенциального бактерицидного эффекта этого типа облучения, что является предпосылкой для будущих клинических испытаний по профилактике ИОХВ и предотвратимых периоперационных осложнений.

Методы

Дизайн исследования

Это исследование представляет собой индивидуальное исследовательское клиническое испытание с участием здоровых субъектов, проведенное в университетской больнице Кобе.Протокол и форма информированного согласия этого исследования были одобрены институциональным наблюдательным советом университетской больницы Кобе (номер утверждения 2

). Это исследование зарегистрировано в Регистре клинических испытаний Медицинской информационной сети университетской больницы (UMIN) (UMIN000027449). Упомянутый испытательный офис находится в отделении ортопедической хирургии университетской больницы Кобе.

Участников

В это исследование были включены здоровые добровольцы в возрасте 20–80 лет без отклонений от нормы в месте облучения ультрафиолетовым излучением, которые предоставили письменное согласие на участие и не соответствовали ни одному из критериев исключения, перечисленных в таблице 1.Период набора участников был установлен в 11 месяцев с 25 августа 2017 года, а период наблюдения был установлен в течение трех месяцев после последнего облучения. Все 20 добровольцев, включенных в исследование, были мужчинами, средний возраст которых составлял 33,7 (26–43) года. На рис. 1 представлена ​​диаграмма CONSORT для потока участников в исследовании.

Процедуры

Оборудование для облучения UVC.

Были использованы эксимерная лампа на основе криптона-хлорида (Kr-Cl) и оптический фильтр, который ограничивает спектр излучения света в диапазоне от 200 до 230 нм с максимальной длиной волны излучения 222 нм (рис. 2).Устройство SafeZoneUVC с излучением 222 нм (Ushio Inc., Токио, Япония), которое было недавно разработано и подготовлено для этого испытания, состоит из лампы, вентилятора воздушного охлаждения, зеркал и специального полосового фильтра (рис. ).

Фильтр используется для блокировки почти всех длин волн, за исключением доминирующей длины волны излучения 222 нм. Энергия излучения, излучаемая светом с длиной волны 222 нм, была измерена с помощью накопительного УФ-измерителя S-172 / UIT250 (Ushio Inc.) и составила 5,5 мВт / см ² .

Метод УФ-облучения.

Область спины здоровых людей была облучена на участке между третьим грудным позвонком и 12-м грудным позвонком, где на коже макроскопически не наблюдаются аномалии. Предлагаемое в настоящее время УФ-излучение с длиной волны 222 нм никогда не применялось у людей; поэтому необходимо изучить соответствующую дозу облучения, которая может продемонстрировать безопасность и достаточный бактерицидный эффект. Принимая во внимание, что минимальная доза эритемы 254-нм УФС составляет 10 мДж / см ² , 500 мДж / см ² была установлена ​​как максимальная достаточная доза облучения.В случае, если появление эритемы наблюдается при 500 мДж / см ² или меньше на этапе 1, максимальная доза облучения, при которой не появляется эритема, устанавливается как доза облучения на этапе 2 данного исследования. Участки облучения доз были расположены отдельно друг от друга, чтобы избежать многократного облучения одной и той же области в ходе этого исследования.

Шаг 1–1: Тест на эритему с меньшими дозами.

UVC 222 нм при 50, 100 и 200 мДж / см ² облучали, и через 24 часа проверяли наличие или отсутствие эритемы.По сравнению с необлученными участками, если на облучаемом участке наблюдаются едва заметные изменения, констатируется наличие эритемы. Об этом судили два или более врачей, и результат считался положительным в отношении эритемы, даже если таковой был оценен одним врачом.

Шаг 1–2: Тест на эритему с более высокими дозами.

Для случаев, в которых эритема не наблюдалась на этапах 1–1, УФС-излучение 222 нм при 300, 400 и 500 мДж / см подвергалось облучению ² , а наличие или отсутствие эритемы исследовали через 24 часа.Максимальная доза, которая вызвала эритему у участника, была определена как минимальная доза эритемы (MED), которая представляет собой наименьшую дозу радиации, которая может вызвать слабую, но легко различимую эритему. На основании самого низкого MED среди всех участников была определена доза на этапе 2, как показано в таблице 2.

Шаг 2.

Облучение максимальной дозой, не вызывающей эритемы на Шаге 1, было выполнено для всех участников. Мазок с кожи собирали до облучения, а также через 5 и 30 минут после него и отправляли на исследование культуры.Кожную ткань облученного участка собирали в течение 1 часа после облучения с помощью биопсии под местной анестезией; кроме того, ДНК экстрагировали из клеток кожи для измерения образовавшегося димера циклобутанпиримидина (CPD) с помощью иммуноферментного анализа (ELISA) в качестве индикатора повреждения ДНК.

Посев из мазков с кожи.

Кожу в облученной области соскребали тампоном (Pro-media st-25. Elmex Co., Ltd. Токио, Япония), и разбавитель тампона полностью фильтровали через фильтр 0.45-мкм мембрана из смешанного эфира целлюлозы (фильтрующая установка EZ-Fit, Merck, Дармштадт, Германия). Отфильтрованную мембрану помещали на поверхность агара для переваривания казеина соевых бобов (Nissui Pharmacy, Tokyo, Japan) в пластиковой посуде и инкубировали при 37 ° C в течение 24 часов. Количество колоний, образовавшихся в чашках, подсчитывали макроскопически. Применяли мембранную фильтрацию, так как ожидалось, что количество собранных бактерий может быть слишком маленьким, чтобы их можно было обнаружить тампоном с узкого участка кожи.

Биопсия кожи.

Под местной анестезией ткань кожи собирали с помощью трепана диаметром 3 мм для биопсии (BP-30F, Kai Industries Co., Ltd. Tokyo, Japan) и быстро замораживали.

Сбор ДНК и ELISA для CPD . Сбор геномной ДНК из ткани биопсии выполняли с использованием набора QIAamp Blood Kit (QIAGEN, Hilden, Германия. Кат. № 51104) в соответствии с инструкциями производителя. Образец геномной ДНК был отправлен в Cosmo Bio Inc., где количество продуцируемого CPD было измерено с помощью набора High Sensitivity CPD / Cyclobutane Pyrimidine Dimer ELISA Kit Ver.2 (Cosmo Bio Inc., Токио, Япония. Кат. № NM-MA-K003) сравнивали среди группы облучения, группы без облучения, положительного контроля и отрицательного контроля. Положительный контроль представлял собой ДНК тимуса теленка, облученную УФС с длиной волны 254 нм с концентрацией 1 мДж / см ² , тогда как отрицательный контроль представлял собой необлученную ДНК тимуса теленка.

Сбор данных

Наличие или отсутствие кожной эритемы через 24 часа после завершения 222-нм УФ-облучения 500 мДж / см ² или меньше было первичным результатом.Вторичные результаты включали наличие или отсутствие эффекта стерилизации местных бактерий кожи при облучении УФС 222 нм, наличие или отсутствие повреждения ДНК в клетках кожи после УФ-облучения и побочные эффекты.

Облученные участки обследовали не менее чем через три месяца после облучения.

Примерный размер выборки

Это первое исследование подобного типа, проводимое на людях, и нет никаких справочных материалов для статистической оценки размера выборки.Таким образом, целевое количество случаев было установлено на уровне 20, чтобы обеспечить широкий набор показателей безопасности и эффективности. Поскольку это исследование является предварительным для будущих исследований, мы установили такой критерий, чтобы этот метод облучения считался достаточно безопасным, когда нижний предел 95% доверительного интервала для эритемы выше 75%. Когда эритема не наблюдается у всех 20 участников, нижний предел 95% доверительного интервала составляет 83,2%.

Статистический анализ

Анализ безопасности.

Для исследования эритемы была оценена доля эритемы, вызванной УФ-излучением 222 нм, и ее доверительный интервал 95%. При оценке повреждения ДНК количество CPD, генерируемых на 222-нм УФС-облученных и необлученных областях каждого участника, было измерено и статистически проанализировано с использованием парного t-критерия. Другие пары данных были статистически проанализированы с использованием непарного t-критерия. Уровень значимости проверки гипотезы был двусторонним 5%.

Анализ эффективности.

Частота обнаружения бактерий с помощью мазков с кожи сравнивалась и исследовалась с использованием знакового рангового критерия Вилкоксона. Уровень значимости проверки гипотезы был двусторонним 5%.

Результаты

Облучение UVC с длиной волны 222 нм и интенсивностью 500 мДж / см не вызывает эритемы

На этапе 1 (тест на эритему) эритема не наблюдалась у всех 20 участников при всех дозах (50–500 мДж / см ² ) УФ-излучения 222 нм (0%, 95% доверительный интервал [от 0% до 16 .8%]). Исходя из этого результата, для шага 2 использовалась доза 500 мДж / см ² .

УФ-излучение с длиной волны 222 нм оказывает бактерицидное действие на кожу человека

Во всех 20 наборах образцов один набор был случайно отброшен до подсчета количества колоний. Таким образом, оценка проводилась на выборках из 19 участников. Количество колоний на мембране было значительно ниже в культурах мазков с кожи как через 5, так и через 30 минут после облучения, чем в культуре мазков из кожи до облучения (рис. 4).

Рис. 4. Количество бактериальных колоний в суспензии культивированных мазков с кожи.

Среднее количество и стандартное отклонение колоний, образованных до облучения, через 5 минут после облучения и 30 минут после облучения составили 7,21 ± 7,48, 0,05 ± 0,23 и 0,79 ± 2,53, соответственно. Каждые данные показаны черным пятном, а отдельные пары данных соединены линиями. Количество колоний значительно снижалось при облучении UVC 222 нм через 5 и 30 минут после облучения, чем при предварительном облучении.Не наблюдалось значительной разницы в количестве колоний между культурами мазков с кожи через 5 и 30 минут после облучения. Аббревиатура: UVC, ультрафиолетовое излучение C.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0235948.g004

Количество CPD при облучении UVC было немного выше, чем без облучения

Количество продуцируемого CPD оценивали и сравнивали для облученной области, необлученной области, отрицательного контроля и положительного контроля.По сравнению с положительным контролем, количество CPD в трех других группах было значительно ниже. Количество CPD, продуцируемого в облученной области, было немного, но статистически значимо выше, чем в необлученной области и отрицательном контроле (рис. 5).

Рис. 5. Количество CPD, оцененное с помощью ELISA.

Поглощение на длине волны 492 нм пропорционально количеству CPD. Среднее значение поглощения и стандартное отклонение положительного контроля, облученных образцов, необлученных образцов и отрицательного контроля составило 3.09 ± 0,07, 0,25 ± 0,05, 0,17 ± 0,04 и 0,14 ± 0,02 соответственно. Все данные показаны черным пятном. Показано, что поглощение положительного стандарта было значительно больше, чем у трех других образцов, а поглощение облучаемой области было значительно больше, чем поглощение необлученной области и отрицательного контроля. Не наблюдалось существенной разницы между необлученной областью и отрицательным контролем. Сокращение: ИФА, иммуноферментный анализ.

https: // doi.org / 10.1371 / journal.pone.0235948.g005

Трехмесячное макроскопическое наблюдение после облучения

Последующая оценка через 3 месяца после облучения показала, что у всех участников не наблюдалось кожных симптомов, включая эритему. Точно так же не было отмечено никаких побочных эффектов.

Обсуждение

Для достижения клинического применения 222-нм УФ-излучения на хирургической ране для профилактики ИОХВ, требуется исследование безопасности и эффективности этого метода.Это исследование было проведено с использованием нормальной кожи человека на первом этапе перед применением метода к хирургической ране для его клинического применения. Насколько нам известно, это первое исследование, посвященное изучению безопасности и бактерицидного эффекта 222-нм UVC у людей. В этом исследовании тест на эритему продемонстрировал, что облучение UVC 222 нм при 500 мДж / см ² или менее не вызывает эритемы, что указывает на то, что эта доза облучения меньше, чем доза, которая может вызвать солнечный ожог. Тест мазка с кожи проводили через 5 и 30 минут после облучения, и культуру мазка в эти моменты времени сравнивали с мазком с кожи необлученной области.Обе временные точки показали значительно меньшее количество колоний, чем в необлученной области, что указывает на то, что УФ-излучение 222 нм при 500 мДж / см ² оказывает бактерицидное действие на кожу человека, которое длится не менее 30 минут после облучения. Объединение результатов тестов на покраснение и мазок с кожи показало, что доза 222 нм UVC без солнечных ожогов может безопасно стерилизовать кожу.

О бактерицидном действии УФС известно давно. Фактически, УФС использовался как бактерицидная лампа.Облучатели UVC с длиной волны 254 нм клинически используются в США и Канаде для лечения пролежней с инфекцией. Одновременно, поскольку УФС цитотоксичен, есть опасения, что могут развиться злокачественные опухоли, такие как меланома и заболевания глаз (например, кератит) [14,16]. Исходя из этого, мы сочли, что длина волны УФС 222 нм безопасна для облучения кожи человека. Это означает, что, поскольку можно безопасно облучать больше доз УФС с длиной волны 222 нм, облучение УФС с длиной волны 222 нм предположительно является более мощным.

Безопасность 222-нм UVC была исследована в экспериментах на животных, проведенных другими организациями. Buonanno et al. выполнили облучение безволосых мышей 254 нм и 222 нм UVC при 157 мДж / см ² и оценили генерируемые CPD и 6–4 фотопродукта в качестве маркеров повреждения ДНК. Результат исследования показал, что генерация CPD и 6–4 фотопродуктов наблюдалась исключительно после облучения UVC с длиной волны 254 нм с подтверждением повреждения ДНК [17]. В другом предыдущем исследовании аналогичным образом сообщалось, что даже хроническое облучение ультрафиолетовым излучением 222 нм при 450 мДж / см ² / день в течение всего 10 дней не вызывало повреждений ДНК у мышей [18].

Эти данные указывают на безопасность УФ-облучения 222 нм на области с роговым слоем. Тем не менее, чтобы применить этот метод для профилактики ИОХВ, облучение следует проверить на области без рогового слоя, например, в местах общего хирургического вмешательства. Клетки человека имеют размер 5–25 мкм, тогда как размер бактерий составляет 1 мкм или меньше. Ранее сообщалось, что 157 мДж / см ² UVC с длиной волны 222 нм не достигает ядра человека, тем самым не вызывая повреждения ДНК [17,19,20].Таким образом, облучение раны без рогового слоя с помощью ультрафиолетового излучения с длиной волны 222 нм теоретически считается безопасным.

Облучение раны без рогового слоя изучалось Narita et al. Фотогенотоксичность ядра клетки с использованием CPD в качестве маркера после 500 мДж / см ² 222-нм UVC на нормальной коже и области без эпидермиса была исследована и сравнена со случаем с 254-нм UVC-облучением [ 21]. Результаты экспериментов показали, что CPD не обнаруживался после облучения UVC 222 нм при 500 мДж / см ² на нормальной коже и что CPD обнаруживался в 60% кератиноцитов после облучения UVC 254 нм.Более того, CPD был обнаружен в 80% фибробластов через 1 час после облучения УФС 254 нм; напротив, CPD не был обнаружен после облучения ран без эпидермиса с помощью УФС с длиной волны 222 нм 500 мДж / см ² .

Хотя в предыдущих исследованиях с участием животных сообщалось, что облучение UVC 222 нм не вызывало CPD, ELISA в этом исследовании показал небольшое, но статистически значимое увеличение CPD в облученной области, чем в необлученной. Это расхождение в результатах могло быть связано с различиями в видах, использованных в качестве испытуемых, и в дозах УФ-излучения 222 нм.Более того, основной причиной расхождения предположительно были разные методы оценки НПР, использованные в этом и предыдущих исследованиях. Предыдущие исследования выполняли гистологическую оценку для оценки CPD, тогда как в этом исследовании использовался ELISA. Предполагается, что ELISA более чувствителен, чем гистологическая оценка, для обнаружения генерации CPD. По оценкам, генерация CPD в клетках кожи человека происходит ежедневно, особенно при нахождении на открытом воздухе в течение 20 минут в солнечный день, как сообщалось ранее [22]; следовательно, создание CPD не обязательно указывает на то, что деятельность является вредной, при условии, что она находится в пределах ремонтопригодности.В этом исследовании CPD был незначительно обнаружен в человеческом ELISA. Однако, учитывая свойство UVC 222 нм на клетках человека, теоретически предполагается, что образование CPD происходит в верхнем слое эпидермиса [13,17,19,20]. В этом исследовании ELISA выявил, что значение CPD, полученное путем вычитания значения CPD отрицательного контроля из значения CPD после облучения UVC 222 нм при 500 мДж / см ² , составляет всего 3,5% от значения CPD положительного контроля. Предыдущее исследование с использованием данных гистохимии, а не данных ELISA, показало, что облучение УФС 254 нм при 150 мДж / см ² на искусственной коже и при 157 мДж / см ² на коже мыши индуцировало продукцию CPD в 50 % и 52.3% кератиноцитов соответственно [17]. Более того, в другом исследовании сообщалось, что количество клеток, экспрессирующих CPD, в кератиноцитах составляет примерно 60% после облучения УФС 254 нм при 150 мДж / см ² на коже мышей [21]. По сравнению с обнаруженным количеством CPD после облучения UVC 254 нм в этих исследованиях, количество, генерируемое облучением UVC 222 нм в этом исследовании, было заметно низким, несмотря на высокую дозу облучения, даже если предположить, что положительный контроль этого отчета дает 100% CPD в кератиноцитах. . В этом исследовании, хотя было невозможно выполнить гистологическую оценку с образцами человека, мы получили данные гистологических исследований по локализации CPD в другой серии исследований [23].Для клинического применения этого метода профилактики ИОХВ необходимо провести исследование на животных, в котором изучается безопасность УФ-излучения с длиной волны 222 нм на модели хирургической раны.

Выводы

Облучение UVC 222 нм 500 мДж / см ² безопасно и оказывает бактерицидное действие на кожу человека. Ожидается, что это будет новый метод профилактики SSI в клинических условиях.

Благодарности

Авторы благодарны г-же М. Ясуда (отделение ортопедической хирургии, Высшая школа медицины Университета Кобе) за ее техническую помощь и биостатистам из Центра клинических и трансляционных исследований больницы Университета Кобе за ценные советы относительно статистического анализа.Авторы хотели бы поблагодарить Editage (www.editage.jp) за редактирование на английском языке.

Список литературы

1. 1. Янг Х.Л., Риз С., Неппер Б., Миллер А., Мофри С., Прайс С.С. Влияние продуктов для предоперационной подготовки кожи на инфекцию области хирургического вмешательства. Инфекционный контроль Hosp Epidemiol. 2014. 35 (12): 1535–1538. pmid: 25419777
2. 2. Битковер CY, Marcusson E, Ransjo U. Распространение коагулазонегативных стафилококков во время операций на сердце в современной операционной.Ann Thorac Surg. 2000. 69 (4): 1110–1115. pmid: 10800802
3. 3. Таммелин А., Хамбреус А., Штал Э. Медиастинит после кардиохирургии: улучшение бактериологической диагностики за счет использования нескольких образцов тканей и типирования штаммов. J Clin Microbiol. 2002. 40 (8): 2936–2941. pmid: 12149355
4. 4. Skramm I, Fossum Moen AE, Aroen A, Bukholm G. Инфекции в области хирургического вмешательства в ортопедической хирургии демонстрируют клоны, аналогичные таковым у носителей ортопедического золотистого стафилококка.J Bone Joint Surg Am. 2014. 96 (11): 882–888. pmid: 24897735
5. 5. Венцель Р.П., Perl TM. Значение носительства Staphylococcus aureus через нос и частота послеоперационной раневой инфекции. J Hosp Infect. 1995. 31 (1): 13–24. pmid: 7499817
6. 6. Манграм А.Дж., Хоран Т.С., Пирсон М.Л., Сильвер LC, Джарвис В.Р. Руководство по профилактике инфекций в области хирургического вмешательства, 1999 г. Консультативный комитет по практике инфекционного контроля в больницах. Инфекционный контроль Hosp Epidemiol. 1999. 20 (4): 250–278; викторина 79–80.pmid: 10219875
7. 7. Александр JW, Соломкин JS, Эдвардс MJ. Обновленные рекомендации по контролю инфекций в области хирургического вмешательства. Ann Surg. 2011. 253 (6): 1082–1093. pmid: 21587113
8. 8. Бинцис Т., Литопулу-Цанетаки Э., Робинсон Р.К. Существующие и потенциальные применения ультрафиолетового света в пищевой промышленности – критический обзор. J Sci Food Agric. 2000. 80 (6): 637–645. pmid: 29345786
9. 9. Риттер М.А., Ольбердинг Е.М., Малинзак Р.А. Ультрафиолетовое освещение во время ортопедических операций и скорость заражения.J Bone Joint Surg Am. 2007. 89 (9): 1935–1940. pmid: 17768189
10. 10. Нуссбаум Е.Л., Флетт Х., Хитциг С.Л., Макгилливрей С., Лебер Д., Моррис Х. и др. Ультрафиолетовое облучение при лечении пролежней у людей с травмой спинного мозга: рандомизированное плацебо-контролируемое исследование. Arch Phys Med Rehabil. 2013. 94 (4): 650–659. pmid: 23246896
11. 11. Thai TP, Houghton PE, Кэмпбелл KE, Woodbury MG. Ультрафиолетовый свет C в лечении хронических ран с помощью MRSA: тематическое исследование.Обработка стомной раны. 2002. 48 (11): 52–60. pmid: 12426452
12. 12. Thai TP, Keast DH, Campbell KE, Woodbury MG, Houghton PE. Влияние ультрафиолетового света C на бактериальную колонизацию хронических ран. Обработка стомной раны. 2005. 51 (10): 32–45. pmid: 16230765
13. 13. Kreusch S, Schwedler S, Tautkus B, Cumme GA, Horn A. УФ-измерения в микропланшетах, подходящих для высокопроизводительного определения белка. Анальная биохимия. 2003. 313 (2): 208–215. pmid: 12605857
14. 14.Pfeifer GP, Besaratinia A. Зависимое от длины волны УФ-излучения повреждение ДНК и немеланома и рак кожи человека. Photochem Photobiol Sci. 2012; 11 (1): 90–97. pmid: 21804977
15. 15. Понная Б., Буонанно М., Велч Д., Шуряк И., Рандерс-Пехрсон Г., Бреннер Д. Дальний ультрафиолетовый свет предотвращает инфицирование MRSA поверхностных ран in vivo. PLoS One. 2018; 13 (2): e0192053. pmid: 29466457
16. 16. Ковальчук С.И., Пристнер М.С., Пирсон А.Дж., Сондерс Р.Д., Буффлер С.Д. Зависимость клеточных ответов в меланоцитах и ​​клетках меланомы человека от длины волны после воздействия ультрафиолетового излучения.Int J Radiat Biol. 2006. 82 (11): 781–792. pmid: 17148262
17. 17. Буонанно М., Понная Б., Велч Д., Станислаускас М., Рандерс-Пехрсон Г., Смиленов Л. и др. Бактерицидная эффективность и безопасность для кожи млекопитающих УФ-излучения с длиной волны 222 нм. Radiat Res. 2017; 187 (4): 483–491. pmid: 28225654
18. 18. Нарита К., Асано К., Моримото Ю., Игараси Т., Накане А. Хроническое облучение ультрафиолетовым светом 222 нм не вызывает ни повреждения ДНК, ни эпидермальных повреждений кожи мышей даже при высоких дозах. PLoS One.2018; 13 (7): e0201259. pmid: 30044862
19. 19. Буонанно М., Станислаускас М., Понная Б., Бигелоу А.В., Рандерс-Пехрсон Г., Сюй Й. и др. Ультрафиолетовый свет с длиной волны 207 нм – многообещающий инструмент для безопасного и недорогого снижения инфекций в области хирургического вмешательства. II: Исследования безопасности in vivo. PLoS One. 2016; 11 (6): e0138418. pmid: 27275949
20. 20. Велч Д., Буонанно М., Гриль В., Шуряк И., Крикмор С., Бигелоу А.В. и др. Дальний ультрафиолетовый свет C: новый инструмент для борьбы с распространением микробных заболеваний, передающихся воздушно-капельным путем.Sci Rep.2018; 8 (1): 2752. pmid: 29426899
21. 21. Нарита К., Асано К., Моримото Ю., Игараси Т., Хамблин М.Р., Дай Т. и др. Дезинфекция и заживляющие эффекты 222-нм УФ-света на метициллин-резистентную инфекцию золотистого стафилококка в ранах мышей. J Photochem Photobiol B. 2018; 178: 10–18. pmid: 29101868
22. 22. Дель Бино С., Бернерд Ф. Вариации цвета кожи и биологические последствия воздействия ультрафиолетового излучения. Br J Dermatol. 2013; 169 Прил. 3: 33–40.
23. 23. Ямано Н., Кунисада М., Кайдзу С., Сугихара К., Нисиаки-Савада А., Охаши Х. и др. Долгосрочное воздействие стерилизующих ламп ультрафиолетового излучения с длиной волны 222 нм на мышей, чувствительных к ультрафиолетовому излучению. Photochem Photobiol. 2020 29 марта. Онлайн в преддверии печати. pmid: 32222977